Tinción de Papanicolaou
Tinción utilizada por excelencia, posee 3 colorantes: la Hematoxilina, Orange G, Policromo; que a su vez incluye 3 colorantes: eosina, verde luz y pardo de Bismark. Esta técnica requiere de fijación de fijación por alcohol-éter, seguido de una coloración y finalmente un montaje con resina recubierto por un cubreobjeto, permitiendo observar:
-Núcleos en azul oscuro
-Nucleolos de color rosados o rojo
-Citoplasma en naranja
(Bermejo, 2006, p.33)

Bermejo, J.G., Sanchez, E.B., Valiente, F.C., Torres, L.C., Roda S., M.P., Martínez, D.G.(2006) Técnicos Especialista en Anatomía Patológica: servicio vasco de salud. España: MAD

Tricrómico de Masson
Tinción que tiñe de forma separada citoplasma y núcleo, se conocen 3 variantes: Con fucsina acida y azul de anilina, con Ponceau de xilidina y el azul de anilina, y con Ponceau-fucsina ácida y azul de anilina. En la tinción con fucsina acida y azul de anilina se observan las estructuras de la siguiente manera:

-Núcleo en negro
-Colágeno y reticulina en verde o azul
-Citoplasma, queratina, fibras musculares, depósitos y hematíes en rojo
(Bermejo, 2006, p.51)

Bermejo, J.G., (2006) Técnico Especialista en Anatomía Patológica Del Servicio Gallego de Salud. España: MAD

Tricrómico de Gallego
Tinción que emplea 2 colorantes; uno para el núcleo y otro para el citoplasma. Esta tinción permite observar

-Colágeno de azul
-Músculo de verde
-Citoplasma de amarillo
-Núcleo de verde

Asa de Henle(2019)Técnicas de coloración. Recuperado de: https://elasadehenle.wordpress.com/histologia/tecnicahistologica/tecnicas-de-coloracion/#:~:text=En%20el%20Tricr%C3%B3mico%20Cajal%20Gallego,M%C3%BAsculo%20de%20verde

Tricrómico de Gomori
método idóneo para teñir fibrina, tejido muscular y citoplasmas, destaca esencialmente el condrioma como un fino granulado rojizo se presenta como una tinción incompleta y difusa del componente fibrilar más fino (membrana basal y finas fibras reticulares) Método de Tinción Tricrómica de un solo paso

Bermejo, J.G., (2006) Técnico Especialista en Anatomía Patológica Del Servicio Gallego de Salud. España: MAD

Tinción de Verhoeff
método que utiliza como colorantes cloruro férrico, hematoxilina y yodo. Las fibras elásticas tiñen en negro, el colágeno en rojo, el músculo y el epitelio queratinizado en amarillo. Los núcleos en azul o negro (Bolognia y Schaffer, 2012).

Bolognia, J. Y Schaffer, J. (2012). Dermatología. España: Elsevier

Tinción de Mallory
Es una técnica para el estudio del tejido conjuntivo. Los cortes se tiñen con fucsina ácida,solución de azul-naranja G de anilina y ácido fosfotungstico. Las fibras de colágeno aparecen en azul, la fibroglia, neuroglia y fibras musculares aparecen en rojo y las fibrillas de elastina en naranja (Bermejo, 2006).

Bermejo, J.G., (2006) Técnico Especialista en Anatomía Patológica Del Servicio Gallego de Salud. España: MAD

Giemsa
-mezcla de colorantes ácidos y básicos.
-Esta técnica tiñe los citoplasmas, núcleos, nucléolos, vacuolas y gránulos de las células, pudiéndose distinguir incluso finas trazas de cromatina.
-es posible visualizar la pérdida de la relación núcleo – citoplasma (Gil, 2019).
permite identificar células inmaduras en médula ósea y sangre periférica, siendo importante para el diagnóstico de enfermedades graves como la leucemia. También es posible detectar hemoparásitos, bacterias extra e intracelulares, hongos, entre otros (Gil, 2019).

Gil, M. (2019). Tinción de Giemsa: fundamento, materiales, técnica y usos. Obtenido de: https://www.lifeder.com/tincion-de-giemsa/

Tinción de Wright
-Reactivo compuesto por eosina y azul de metileno, cuando éste se oxida se conoce como azur B a una concentración de 0.8 g/L empleando como solvente alcohol metílico.
esta técnica se emplea generalmente para la diferenciación de elementos celulares de la sangre y es clasificada como una tinción policromática, dado que puede teñir compuestos ácidos o básicos presentes en una célula (Koneman E, 2006).

Koneman E. (2006). Diagnóstico microbiológico, 6a ed. México DF: Editorial Médica Panamericana S.A.

Tinción Ácido Peryódico de Schiff (Tinción PAS)
-utilizada para evidenciar algunos polisacáridos (particularmente, glucógeno), así como las mucoproteínas que contienen mucopolisacáridos neutros.
-Tecnica útil para valorar la degeneración fibrinoide, ya que tiñe de rojo los depósitos de fibrina permite visualizar elementos infecciosos como parásitos y hongos.
La reacción se debe a que el ácido peryódico oxida las uniones carbono-carbono de los carbohidratos donde hay hidroxilos adyacentes y NH2 primarios o grupos amino secundarios, cediendo aldehídos que pueden reaccionar con el reactor Schiff, responsable de la coloración roja provocada por la unión de leucofucsina con dialdehido (Calvo GA; Esteban RFJ; Montuenga FL, 2009).

Calvo GA, Esteban RFJ, Montuenga FL. (2009). Técnicas En Histología Y Biología Celular, 2da Ed. Madrid, España: Elsevier.

Método de Perls
- El colorante usado en esta tinción es el Azul de Prusia, una dilución de 1:1 de ácido clorhídrico y ferrocianuro potásico.
-La coloración de Perls se realiza esencialmente para la demostración de pigmentos férricos, ya sea en tejidos o en estudios citológicos. La tinción de Perls pone de manifiesto la presencia de hemosiderina en el citoplasma de los hematíes en sangre periférica o en médula ósea (Cotran RS; Kumar V; Collins T, 2000).

Cotran RS, Kumar V, Collins T. (2000). Patología Estructural Y Funcional. New York: Mc Graw – Hill. Interamericana.