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REPORTE L-4
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- 1Tinción de PapanicolaouEs un examen basado en la coloración de smears* en general (vaginal, cervical, prostático), Existen varias soluciones de Papanicolaous como Hematoxilina de Harris (EA50, EA65,EA36), Naranja G, Eosina.
Permite observar:
*núcleos-----------------------------------en azul
*células acidófilas------------rojo a naranja *células basófilas------verde o azul verdoso
*células o fragmentos
de tejido impregnados de sangre----naranja o naranja verdoso
Muestra: Células cervicales normales
(Iglesias Ramirez, 2020)
- 2Tricrómico de MassonEsta tinción emplea tres colorantes. Son la hematoxilina, la fucsina y el verde luz. Esta tinción es muy útil para poner de manifiesto las fibras de colágeno, y el conectivo en general, en comparación células musculares o epitelios.
Se puede Observar:
*Colágeno: verde azulado.
*Músculo: rojo, marrón.
*Citoplasma: rosado.
*Núcleos: negro.
*Citoplasma: rosado lila.
Sección de parafina de 8 µm de grosor teñidas con tricrómico de Masson. Zona profunda de la lengua de rata.
(Paniagua, 2019)
- 3Tricrómico de GallegoEs un colorante nuclear es la fuscina acética y como colorante citoplamático o extracelular el Picro Índigo Carmín, que consiste en varios colorantes.
Se puede observar:
• Colágeno de azul
• Músculo de verde
• Citoplasma de amarillo
• Mucus de rojo
• Núcleo de verde
Muestra: Osificación endocondral
(Ross, 2007)
- 4Tricrómico de GomoriTinción que se emplea tanto para tejidos como para extendidos celulares y se visualizan:
• Fibras musculares en rojo.
• Colágeno en verde.
• Núcleos de azul a negro.
• Fibras elásticas, células β de los islotes pancreáticos y los gránulos de la hipófisis, en tonos que van desde el violeta hasta el morado.
(Fortoul, 2013, p.17).
- 5Tinción de VerhoeffEsta tinción se utiliza para fibras elásticas y permite ver:
• Fibras elásticas negras.
• Núcleos en rojo.
• Colágeno en rojo.
• Otras estructuras en amarillo.
Muestra: Arteria elástica (aorta).
(Fortoul, 2013, p.17).
- 6Tinción de MalloryPermite distinguir fibras colágenas, reticulares, elásticas así como fibrillas neurogliales
El colágeno se tiñe de azul intenso
El amiloide de azul claro.
Las fibras elásticas, la neuroglia y la fibrina se tiñen de rojo
.(Cediel, et. Al, 2009)
Muestra de tejido conectivo 100X
(Koneman, 2006)
- 7Tinción de Giemsacoloración de muestras clínicas, basada en la mezcla de colorantes ácidos y básicos.
Es ampliamente usada para células sanguíneas, bazo y médula ósea. También útil para la identificación de protozoarios.
Los gránulos eosinófilos se tiñen de rojo intenso
Los mastocitos se tiñen de azul o púrpura
(Cediel et. Al, 2009)
muestra sanguínea con parasitos Trypanisoma evansi 100X
(Cediel et. Al, 2009)
- 8Tinción de Wrightla tinción de Wright nació de la tinción de Romanowsky, que consiste en una solución de alcohol metílico de un colorante ácido (eosina Y) y otro básico (azul de metileno) y sus productos de oxidación. Esta técnica de coloración es utilizada para realizar recuentos diferenciales de glóbulos blancos y estudiar la morfología de los glóbulos rojos, plaquetas y leucocitos en sangre periférica y médula ósea.
proporciona una coloración púrpura a los núcleos de los leucocitos y a los gránulos neutrofílicos
mientras que los glóbulos rojos se tiñen de color rosado.
(Cediel. et. AL, 2009)
- 9Ácido peryódico de Schiffse utiliza para evidenciar la presencia de grupos aldehídos formados por oxidación previa de los hidratos de carbono. El fundamento de la reacción consiste en oxidar los tejidos mediante el ácido peryódico para incrementar el número de grupos carbonilos (aldehídos o cetonas) presentes en ellos. Posteriormente, se trata la muestra con el reactivo de Schiff que reacciona con dos grupos aldehídicos contiguos dando lugar a una coloración rojo-púrpura característica.
Tiñe el Núcleo de Violeta-negro
Tiñe Polisacáridos simples (glucógeno), mucopolisacáridos neutros, mucoproteínas, membrana basal, glucolípidos Rojo-Púrpura
(Cediel. et. AL, 2009)
- 10Método de PerlsEste método se utiliza para demostrar hemosiderina, que es un producto de la degradación de hemoglobina y permite ver:
• Hierro en azul de Prusia.
• Fondo en rosa-rojo.
Muestra: coágulo en la luz de un vaso.
(Fortoul, 2013, p.21).
- 11ReferenciasCediel, J. , Cárdenas, M., García, A. , Páyan, C. & Sánchez, C. (2009). Manual de histología. Tejidos fundametales. Facultad de medicina, Bogotá. Editorial Universidad del Rosario
Fortoul, T. (2013). Histología y biología celular. (2° Ed.). México: McGraw Hill
http://www.sld.cu/sitios/histologia/temas.php?idv=15445
Keohane, M. , Smith, L. & Walenga, J. (2013). Clinical principles and applications. 5ta. Ed. Estados Unidos, editorial ELSEVIER.
masson.php#:~:text=TINCI%C3%93N%3A%20TRICR%C3%93MICO%20de%20MASSON,com
Paniagua, R. (29 de Mayo de 2019). Atlas de histología vegetal y animal. Obtenido de https://mmegias.webs.uvigo.es/6-tecnicas/protocolos/p-tincion-t-
paraci%C3%B3n%20c%C3%A9lulas%20musculares%20o%20epitelios.
Ramirez, B. (Marzo de 2020). Aplicando la Histología. Obtenido de
Ross, M. (2007). Histología: Texto y atlas color con Biología Molecular Y Celular. México: Editorial Médica Panamericana. - 12Grupo no.4 Sección B-Katerine Rocxanda Cabrera Molina 201804250
-Kimberly Dayana Ibañez Reyes 201804010
-Fatima Yadira Tello Flores 201804247
-Andrea Janeth Arqueta Flores 201804021
Informationen
- Beschreibung
- Karteikarten am REPORTE L-4, erstellt von Katy Cabrera am 25/08/2020.
- Erstellt von
- Katy Cabrera
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