Karteikarten
Reporte L-4
Karten in diesem Stapel (14)
- 1Tinciones Histoquimicas Grupo 6 seccion EIntegrantes
Adriana María Orozco Ocaña 201908792
Idania Sarai Paredes Espina 201908707
Laura Isabel Estrada Sagastume 201908673
Dafne Daniela Jerónimo Chete 20190021 - 2Tinción de Papanicolau (Fortoul, 2013, pp. 29);(Loonprom, s.f)Usa tres colorantes básicos y sus mezclas, el colorante nuclear lo proporciona la hematoxilina de Harris que produce una impregnación de la estructura cromática y los colorantes del citoplasma, que son el OG6 que contiene naranja G6 y el EA-50 constituido por una mezcla de light green, fast green, pardo de Bismarck, ácido fosfotúngstico, carbonato saturado de litio y eosina.
Muestra: Tricomonas en frotis de Papanicolaou en vista de fondo blanco (600x) - 3Tricrómico de Masson (Fortoul, 2013, pp. 180)Se emplean tres colorantes para teñir distintos componentes en diversos colores, requiere fijación o posfijación en Bouin, y permite ver:
• Núcleos en negro.
• Músculo, citoplasma y queratina en rojo.
• Colágeno en azul o verde dependiendo del contraste que se use.
Muestra: Ganglio linfático (100×)
- 4Tricrómico de Gallego (Fortoul, 2013, pp. 208)Requiere de tres colorantes para teñir distintos componentes en diversos colores, Permite observar:
• Núcleos en azul
•Fibras elásticas en magenta
• Eritrocitos en verde limón
• Otras estructuras en verde.
Muestra: corte de piel delgada (400×)
- 5Tricrómico de Gomori (Fourtoul, 2013, pp.17) (Megías , Molist & Pombal 2019)Emplea tres colorantes para teñir diferentes componentes. La tecnica tiene fijacion de Bouin e incluidas en parafina para observar:
• Colágeno en verde
• Músculo en rojo
• Núcleo en negro
• Citoplasma rosado
• Fibras elásticas van de violeta a morado
Muestra: Oreja de rata (400x)
- 6Tincion de Verhoeff (Fourtoul, 2013, pp. 103)Tincion que utiliza tres colorantes para teñir diferentes componentes. Esta tecnica requiere fijacion de Bouin y en ella se observa:
• Fibras elásticas y núcleo en negro
• Colageno en rojo
• Otras estructuras como el epitelio queratinizado en amarillo
Muestra: Fibras elasticas de la capa media de la aorta (400x)
- 7Tinción de Mallory (Ross, 2015)Se utilizan tres colorantes ácidos: anilina azul, fuscina ácida y naranja G. Tiñe de forma selectiva
• Colágeno en color azul
• Núcleos, mielina y eritrocitos en rojo
• Fibras elasticas en rosa
Muestra: corte de tejido conjuntivo denso 540x.
- 8Giemsa (Azúa, 1997; Ross, 2015)Está basada en la mezcla de colorantes ácidos y básicos; resalta características del citoplasma (gránulos y vacuolas) de coloracion roja y del estroma (coloide, moco, colágeno o sustancia mixoide) y cromosomas.
Muestra: frotis de médula ósea 180x.
- 9Wright (Carr y Rodak, 2010; Ross, 2015)Tinción policrómica que contiene eosina y azul de metileno utilizado para frotis de sangre.
• Eritrocitos en rosado
• Neutrófilos, eosinófilos y basófilos en coloracion morado
Muestra: frotis de sangre 350x.
- 10Ácido periódico de Schiff (Serviansky , Tronik, Coutiño, Arenas & Memije 2013).La técnica de PAS se utiliza en el laboratorio dentro de los preparados para microscopia óptica, permitiendo la tinción de componentes celulares que contienen hidratos de carbono. Se utiliza para :
Revelar la membrana basal de epitelios, anexos y vasos, por lo que es útil para diferenciar o resaltar algunos tipos celulares y la distribución del colágeno entre células neoplásicas.
Demostración del glucógeno
Visualizar elementos infecciosos como parásitos y hongos
Muestra: Membrana basal (40x).
- 11Método de perls (Stain ,2016).Técnicas citoquímica más antigua, esta técnica pone en evidencia la presencia de complejos insolubles de Fe por la formación de un precipitado coloreado (azul de Prusia) y permite:
Conocer las reservas de hierro (Fe) en la médula ósea (MO), que se encuentran en forma de hemosiderina
Diagnóstico de una variedad de patologías hematológicas
Muestra: Médula osea (200X)
- 12Referencias Bibliograficas• Azúa, J. (1197) Punción aspiración con aguja fina. España: Díaz de Santos.
• Carr, J.H. y Rodak, B.F. (2010) Atlas de hematología. México: Médica Panamericana.
• Fortoul, T. (2013). Histología y biología celular. México: McGraw-Hill
• Megías M, Molist P, Pombal M. (2019). Atlas de histología vegetal y animal. Técnicas histológicas. Recuperado de: http://mmegias.webs.uvigo.es/6-tecnicas/1-introduccion.php - 13Referencias bibliograficas• Loonprom, K. (s.f). Trichomonas in pap smear on white background view in microscopic.Medical background.Cytology and pathology laboratory department.Sexually transmitted diseases.Magnification 600 X. Recuperaado de: https://www.shutterstock.com/image-photo/trichomonas-pap-smear-on-white-background-1511479997
• Ross, M.H. (2015) Histología texto y atlas. México: Wolters Kluwer.
• Stain, P. I. (2016). Tinción de hierro medular. Coloración de Perls. Hematologia: Volumen 20-Nº2, 2(2), 243-246.
• Serviansky, T., Tronik, N., Coutiño, G., Arenas, R., & Memije, M. (2013). Utilidad de la tinción PAS para el diagnóstico histopatológico. Dermatología cosmética, médica y quirúrgica, 11(1), 13-18. - 14—
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- Beschreibung
- Tinciones histoquimicas Laboratorio de Citohistologia Humana
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- Adriana María Orozco Ocaña
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