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FICHAS_REPORTE 4
Karten in diesem Stapel (13)
- 1REPORTE L-4 "Principales tinciones citológicas e histoquímicas"Integrantes
Adriana Vásquez Dieseldorff 201809958 Marilyn Magaly Pérez Antonio 201803678 Beverly Rocio Chacón Cabrera 201901036 Lisbeth Mariandree Mogollón Carrillo 201809866 - 2TINCIÓN DE PAPANICOLAULa coloración de Papanicolaou es la técnica por excelencia de la citología general como la hematoxilina eosina lo es para el método histológico. Existen varias soluciones de Papanicolaous, pero todas son variantes de los siguientes colorantes:
- Hematoxilina de Harris (EA50,
EA65,EA36)
- Naranja G
- Eosina
Resultado de las tinciones celulares: Núcleos --> Azul
Células acidófilas --> Rojo a naranja Células basófilas --> Verde o azul verdoso Células o fragmentos de tejido impregnados de sangre --> Naranja o naranja verdoso
(Rodríguez, 2020).
- 3TRICRÓMICO DE MASSONEsta tinción es muy útil para poner de manifiesto las fibras de colágeno, y el conectivo en general, en comparación células musculares o epitelios. Se emplea mucho en la diagnosis de procesos tumorales. Como su nombre indica esta tinción emplea tres colorantes que son la hematoxilina, la fucsina y el verde luz. permite observar:
- Colágeno: verde azulado.
- Músculo: rojo, marrón.
- Citoplasma: rosado.
- Núcleos: negro.
- Citoplasma: rosado
(Atlas de histología vegetal y animal, 2020).
- 4TRICRÓMICO DE GALLEGOEn el tricrómico de Gallego, el colorante nuclear es la fuscina acética y como colorante citoplasmático o extracelular el Picro Índigo carmín, que consiste en varios colorantes. Permite observar:
-Núcleos en azul.
-Fibras elásticas en magenta.
-Eritrocitos en verde limón.
-Otras estructuras en verde
(García y Fernández, 2006, p.84). - 5TRICRÓMICO DE GOMORISolución de colorantes que se emplea en histología para teñir tejido conectivo. Luego de la tinción nuclear como hematoxilina-hierro, los cortes se lavan y colorean con una solución que contiene cromotropo 2R, verde claro SF (amarillo), ácido fosfotúngstico y ácido acético glacial. Permite observar:
-Las fibras musculares en rojo.
- El colágeno en verde.
-Los núcleos de azul a negro.
-Fibras elásticas, Células de los islotes pancreáticos y los gránulos de la hipófisis, en tonos que van desde el violeta hasta el morado.
Sin embrago, por su pH ácido, que se encuentre entre 2.5 y 2.7, siendo un pH por encima del óptimo para teñir colágeno, es por ellos que es una tinción incompleta y difusa del componente fibrilar más fino
(Bennington, 1991, p.297).
- 6TINCIÓN DE VERHOEFFTinción permanente de hematoxilina hierro-yodo que sitúa el tejido epitelial y la lámina basal. Se pueden utilizar como coloraciones de contraste eosina o picrofucsina de van Gieson. Permite observar:
-Colágeno y elastina de color rojo tinto.
-Núcleos de color negro grisáceo.
-Fibroblastos color amarillo
(Bennington, J., 1991, p.298).
- 7TINCIÓN DE MALLORYTinción tricrómica compuesta por naranja G, azul de anilina y fucsina ácida. Permite observar:
-Núcleos de fucsia/rojo.
-Colágeno de azul oscuro.
-Tejido conectivo y moco azul claro.
-Fibrina y neuroglia de rojo.
-Tejido nervioso en lila
(Diccionarios Oxford-Complutense, 2001, p.495).
- 8Tinción GiemsaMezcla de colorantes básicos de azul de metileno (azur A y B) y eosina. Se utiliza para teñir extendidos de sangre periférica y extendidos gruesos de sangre para demostrar e investigar la presencia de parásitos. Se fija con metanol absoluto. Permite observar:
-Eritrocitos de color naranja/rosado.
-Núcleos de leucocitos color azul púrpura.
-Citoplasma color marfil o azul claro.
-Granulaciones neutrófilas color pardo claro.
-Granulaciones basófilas color púrpura
(Bennington, J., 1991, p.294).
- 9WRIGHTEs una modificación de la técnica Romanovsky (Ross y Pawlina, 2011, p.302) es utilizada con mayor frecuencia para frotis de sangre periferica o médula ósea. Contiene eosina y azul de metileno por lo que se denomina tinción policrómica (Carr y Rodak, 2009, p.5). Permite observar:
-Eritrocitos
-Núcleos de leucocitos
-Granulos de eosinófilos
-Citoplasma de linfocitos y monocitos (Sepúlveda, p.4)
- 10Ácido periódico de SchiffLa capacidad de la fucsina básica decolorada (reactivo de
Schiff) para reaccionar con los grupos aldehído trae como
consecuencia la aparición de un color rojo distintivo, que es
la base de las reacciones de PAS (ácido peryódico-reactivo de
Schiff) (Ross y Pawlina, 2011, p.6). Permite observar:
-Tiñe hidratos de Carbono y Macro moléculas
-Demostración de fibras reticulares y membranas
basales.
-Demostración de hongos.
-Demostración de ciertos tipos de mucosustancias
secretadas por el epitelio de varios órganos del tracto
digestivo, respiratorio y genital femenino (cérvix) (Fortoul, 2013, p.19).
- 11Método PerlsLa reacción de azul de Prusia o de Perls para
hierro pone en manifiesto la presencia de hemosiderina (pigmento endógeno rico en hierro) del citoplasma en la sangre periférica esto se debe a la PAS-amilasa y el azul alcián de
reacciones de polisacáridos y reacciones para lípidos y esfingolípidos (Mescher, 2016, p.10). Permite observar:
-Hierro en azul de prusia
-Hemosiderina (Fortoul, 2013, p.21).
- 12REFERENCIASBennington, J. L. (1991). Diccionario Enciclopédico del Laboratorio clínico. Madrid, España: Médica Panamericana.
Carr, J. y Rodak, B. (2009). Atlas de Hematología Clínica. Madrid: Editorial Médica Panamericana
De Barbosa, C. (2002). Histology of the hernial sacs of direct, indirect, relapsed and incarcerated inguinal hernias in adults and children: identification of smooth muscles fibers. Revista do Colégio Brasileiro de Cirurgioes, 29(1), 1-6. Recuperado de https://www.researchgate.net/publication/262613763_Histology_of_the_hernial_sacs_of_direct_indirect_relapsed_and_incarcerated_inguinal_hernias_in_adults_and_children_identification_of_smooth_muscles_fibers.
Diccionarios Oxford-Complutense. (2001). Diccionario de Medicina. Madrid, España: Complutense.
Fortoul, T. (2013). Histología y Biología Celular. México: Mc Graw Hill
García, E., y Fernández, H. (2006). Histología humana práctica: Odontología. Madrid: Editorial Universitaria Areces.
García, J., Lariño, J. & Domínguez, J. (2014). Tumores Sólidos Pancreáticos. España: Diaz de Santos - 13Geneser, F., Bruel, A., Ilso, E., Tranum, J. y Qvortrup, K. (2012). Geneser Biología. México: Editorial Mescher, A. (2016). Junqueira's Basic Histology. New York: Mc Graw Hill Pyc, D. (2017). Citotécnico de Prácticas. Asociación española de técnicos de laboratorio. Recuperado de: https://citotecnicbarcelona.wordpress.com/2017/05/23/a-la-cuarta-va-la-vencida/ Rodríguez, I. (2020). Aplicando la Histología. Recuperado de http://www.sld.cu/sitios/histologia/tema Ross, M. y Pawlina, W. (2007). Histología: Texto y Atlas Color con Biología Celular y Molecular (5° ed.). Argentina: Médica PanamericanaRoss, M. y Pawlina, W. (2011). Histología. Madrid: Editorial Médica Panamericana
Sepúlveda, J. (2012). Texto Atlas de Histología Biología Celular t Tisular. México: Mc Graw Hill
Yanoff, M., Ducker, J. (2019). Oftalmología. (5° ed.) España: Elsiever
Zarco, S. (s.f.). Histología Animal. Recuperado de https://simplebooklet.com/shaniqozark16#page=20
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- Reporte 4, Citohistología_Grupo1_Sección C
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- M An
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