Microorganismos deteriorantes

Microorganismos deteriorantes

1. Proteolíticos

   • Son las responsables de catalizar la hidrólisis de los enlaces peptídicos de otras proteínas, dando como resultado la producción de péptidos o aminoácidos libres.
   • Degradan a las proteinas
     • Consiste en un grupo heterogéneo
       • Clostridium Bacillus Proteus Pseudommonas Streptococcus Micrococcus Aspergillus Penicillium Mucor etc.
   • Producen proteinasas extracleulares
   • Las ácidos-proteolíticas generan una fermentación ácida y proteólisis
   • Producen putrefacción Generar compuestos mal olientes como Sulfuro de hidrogeno (H2S), mercaptanos, aminas, indol y acidos grasos. Y cambios en la textura
   • Hay aerobias o facultativas y esporuladas
   • Metodología: Agar leche desnatada, Agar Marino suplementado con caseína al 1%.

2. Lipolíticos

   • Productores de lipasas
   • Hidrolizan las grasas a ácidos grasos y glicerol
   • Alteran el sabor y el olor rancio aun en concentraciones bajas
   • Bacterias psicotróficas, hongos, verduras, quesos y mantequilla
     • Pseudomonas fluorescens, Micrococcus, Alcaligenes, Serratia
   • Metodologia: Puntos de muestreo, criterio de actividad lipolitica, Procedimientos de aislameinto y resiembra, y por ultimo la caracterización
     • Se realizaron diluciones seriadas en agua peptonada al 0.1 % hasta obtener una dilución 10-8 . Se sembró por vertido en agar tributirina y se incubó a 37°C en condiciones aeróbicas por 24 a 48 horas.

3. Osmófilos

   • Necesitan altas concentraciones de azúcar para crecer
   • Causan perjuicios en jarabes y alimentos con azúcar
     • Microorganismo osmofolicos
       • Aspergillus niger, Aspergillus sydawi, Penicillum sp., Saccharomyces rouxii, Saccharomyces mellis, Hansenula anomala, Pichia membranaefaciens
   • Crecen mejor en ambientes hipertónicos
   • Utilizan disacáridos con la finalidad de proteger sus membranas plasmáticas y proteínas de as desecación
   • Medios de cultivos
     • PDA, Agar Dicloran Glicerol DG188, Agar My-40 Agar Wort con 35% de sacarosa y 10% de D(+) glucosa, Agar suero naranja con 20% de sacarosa
       • Dejas las palcas en reposo hasta que se solidifique el agar. Incubar a 25°C, por 15 dias.
   • Método por vertido
     • Diluir la muestra con agua destilada estéril, mezclar y homogenizar bien. Realizar diluciones seriadas.

4. Halófilos

   • Necesitan ciertas concentraciones de NaCl para crecer.
   •  Moderadamente halófilos (5 – 20% NaCl)  Halófilos extremos ( 20 – 30% de NaCl)  Escasamente halófilas ( 2 -5% de NaCl)  Halotolerantes: Con o sin sal.
   • Estos microorganismo provocan una condición como "pink fish", una coloración en el pescado salado, en la salmuera y en la sal, asi como olores y sabores noralemntes relaicondos con el deterioro (sulfuro de hidrogeno e indol), Alimentos conservados con sal, Sauerkraut, pepinillos, aliemntos salazonados
   • Microorganismos Halófilos
     • Actinopolyspora halophila, Halobacterium, Salinicoccus Nocardioides aquaticus, Nocardiopsis halophila, Nocardiopsis kunsanensis, Nocardiopsis lucentensis, Nocardiopsis xinjiangensis, Saccharomonospora halophila, Saccharomonospora paurometabólica, Streptomonospora alba, Streptomonospora salina
   • Metodologia
     • Prueba In Vitro: Prepar soluciones con diferentes concentraciones de Na Cl, Na SO4 y Na NH3, sales comúnmente encontradas en suelos salinos. Inocular con las bacterias seleccionadas, medir la concentracion inicial y final de cada una de las soluciones preparadas. Medio de cultivo: TSA con NaCL al 3%, Agar Nutritivo

5. Termófilos

   • Temperatura optima de crecimiento arriba de 45°C, pudiendo superar incluso los 100°C
   • Bacillus spp. causa fermentación ácida en algunos alimentos enlatados.
   • Clostridium termosacharolyticum, alteración gaseosa
   • Microorganismos termófilas
     • Rhodothermus obamensis, Género Caldicellulosiruptor, Clase Thermomicrobium, Rhodothermus marinus, Deferribacter desulfuricans, Marinithermus hydrothermalis, Thermodesulfobacterium hydrogeniphilum, Thermus aquaticus, Sulfurivirga caldicuralii
   • Metodología
     • Tomar 10g de muestra y macerarla. En caso que la muestra sea liquida tome 10mL en probeta esteril. Agregar la muestra al Erlnmeyer que contiene 90 mL de agua pepetonada. Realice diluciones seriadas hasta 10^3. Sembrar en profundidad cad auna de las diluciones por duplicado. Incubar a 55°C +/-2 durante 72 hrs. Realizar el recuento de UFC

6. Piscrófilos

   • Capaces de desarrollarse a 0°C o menos
   • Alimentos refrigerados, son las principales repsonsables del deterioro de los alimentos de origen animal, como carnes crudas o cocidas, mariscos frescos o cocidos, productos lacteos y manqtequilla
     • Pseudomonas, Micrococcus, Arthrobacter, Flavobacterium, Lactobacillus, Alcaligenes, Enterobacter
     • Microorganismos psicrofilos
   • Varian según su nivel de requerimiento y toleración al oxigeno, alternando entre aerobios y anaerobios estrictos y facultativos
   • Metodologia:
     • Agares: Plate count agar (PCA), Violet Red Bile Agar (VRBA), Peptona, Dickinson & Company
     • Tomar 10g de muestra y macerarla. En caso que la muestra sea liquida tome 10mL en probeta esteril. Agregar la muestra al Erlnmeyer que contiene 90 mL de agua pepetonada. Realice diluciones seriadas hasta 10^3. Añadir 15 mL de medio de cultivo y dar movimeintos circulares y de vaivén para se distribuyan la muestra uniformenete. Incubar: una serie de placas a 20°C/ 3 dias y realizar el recuento de UFC