Biología de suelo

Biología de suelo

1. Meso y macrofauna

   • Equipos e instrumentos utilizados
     • MESOFAUNA
       • un extractor metálico cilíndrico, tipo sacabocados -sistema de Berlese-cuchillo
         • MACROFAUNA
           • un marco cuadrado, de madera o de metal-una pala ancha-pala de punta-nylon-bandeja plástica blanca
   • profundidad de muestreo recomendado
     • MESOFAUNA
       • para evaluar el efecto de usos y manejos agropecuarios, se recomienda muestrear hasta los 10 cm de profundidad, separando cada muestra en tres submuestras: 1) hojarasca o rastrojos; 2) suelo mineral de 0 a 5 cm; y 3) suelo mineral de 5 a 10 cm.
         • MACROFAUNA
           • desarrollado para suelos tropicales, se sugiere muestrear hasta los 30 cm de profundidad Lo ideal es separar la muestra en tres submuestras: 1) hojarasca o rastrojos; 2) suelo mineral de 0 a 10 cm; y 3) suelo mineral de 10 a 20 cm
   • Variables de control para la toma de muestras
     • En el caso de la macrofauna, excepto las lombrices, recomendamos realizar la fijación de los ejemplares a campo.
       • En el caso de las lombrices, en cambio, recomendamos llevar al campo recipientes plásticos de aproximadamente 100 ml de capacidad en los que se colocará parte del suelo correspondiente a cada muestra
         • Es importante durante el trabajo de campo mantener estos recipientes a la sombra en un lugar fresco, y que los tiempos de transporte al laboratorio sean lo más acotados posibles
           • se recomienda no colocar más de 20 individuos en cada recipiente.
   • Especificaciones técnicas
     • MESOFAUNA
       • se deben colocar en bolsas de plástico rotuladas, de tamaño adecuado, y disponer en contenedores rígidos para evitar la compactación entre muestras
         • Se debe evitar por completo la exposición de las muestras al sol, por ejemplo guardándolas en heladeras de camping o cajas de cartón
           • El tiempo de extracción en el Berlese depende de la cantidad de suelo y de la humedad del mismo, pero en general entre los 7 a 10 días se logra extraer la fauna.
             • MACROFAUNA
               • Todos los invertebrados colectados manualmente a campo serán colocados en tubos herméticos con alcohol al 96 %
                 • Es importante realizar esta limpieza de los tubos lo antes posible.

2. Microbiología general

   • profundidad de muestreo recomendados
     • La norma ISO 10381-6 (1993) recomienda realizar los muestreos para variables microbiológicas a una profundidad máxima de 20 cm
       • las muestras para determinaciones microbiológicas, en general, se extraen a una profundidad que puede variar entre 0-5 cm a 0-10 cm
         • disponibilidad de nutrientes muy móviles, con intervalos de 10 a 20 cm
   • Equipos e instrumentos utilizados
     • el barreno y la pala-espátula o cuchillo-el balde o lienzo
   • Variables de control para la toma de muestras
     • Si en el sitio de muestreo se observa la presencia de un horizonte orgánico se debe proceder a eliminarlo, raspando la superficie con una espátula pero sin eliminar suelo.
       • zonas muy homogéneas, se recomienda que la muestra compuesta esté constituida por al menos 7-10 submuestras
         • Si existen manchones o problemas localizados, considerar cada uno individualmente
           • Es conveniente antes de muestrear, eliminar la cobertura vegetal, sin descartar suelo o costras superficiales en suelos bajos o salinos.
       • Si el suelo fue fertilizado o encalado, es conveniente esperar más de 30 días antes de muestrear.
   • Especificaciones técnicas
     • Las condiciones de temperatura y humedad ambiente deben ser lo más óptimas posible
       • las muestras serán tamizadas con tamiz de malla de 2mm.
         • las muestras se conservarán en heladera durante 7 días para estabilizarlas.

3. Hongos micorrícicos arbusculares

   • Equipos e instrumentos utilizados
     • Bolsas de tamaño adecuado-Tarjetas de identificación de las bolsas, hilo, marcadores permanentes-muestreadores metálicos-maza, anillos sinfín-pala-Bidones con agua-cilindro-Ropa de trabajo y elementos de seguridad
   • profundidad de muestreo recomendados
     • la mayor abundancia de hongos micorrícicos se encuentra en los primeros 20 cm.
       • la mayor abundancia y actividad de hongos se encuentre en la fracción 10-20 cm de suelo
         • los mayores grados de colonización micorrícica entre los 10- 20 cm
   • Variables de control para la toma de muestras
     • Evitar realizar la colecta de muestras en áreas atípicas
       • Evitar todo tipo de contaminación de las muestras
         • sea realizar estudios moleculares, la muestra se colectará utilizando un muestreador
   • Especificaciones técnicas
     • Se recomienda que las muestras sean transportadas en oscuridad, sin exposición directa a elevadas temperaturas o luz solar.
       • Las muestras deben ser transportadas en contenedores preferentemente refrigerados
         • los materiales de muestreo deberán lavarse antes y después de colectar las muestras, con abundante agua y alcohol 70%
           • Si las muestras de raíces van a ser sometidas a análisis molecular o no se prevee la llegada de las muestras al laboratorio en las próximas 24 hs,

4. Microfauna: nemátodos

   • Equipos e instrumentos utilizados
     • barreno, muestreadores de suelo y en el caso de no poseer puede usarse una pala
   • profundidad de muestreo recomendado
     • La profundidad de la muestra dependerá del hospedante, el tipo de suelo y las especies de nematodos presentes las muestras obtenidas entre los 15 y 30 cm
       • En césped (golf, turf) y en lotes con pasturas, las muestras simples (Ms) se deben tomar de 0 a 10 cm de
   • Variables de control para la toma de muestras
     • Planificar el muestreo, dividir el lote a muestrear en áreas uniformes considerando la topografía, vegetación y manejo
       • Las MC deben ponerse en bolsas selladas, etiquetarse y evitar la pérdida de humedad, de parte de su contenido o su mezcla con otras muestras, prevenir la exposición al exceso de calor o de la luz directa del sol,
       • Realizar el muestreo preferiblemente en otoño o en verano, épocas de mayor densidad de nematodos en el suelo,
         • No tomar muestras cuando el suelo está seco o muy húmedo,
   • Especificaciones técnicas
     • Las muestras compuestas deben ponerse en bolsas selladas de 1 a 2 litros de capacidad, etiquetarse y colocarse en recipientes aislados para evitar la pérdida de humedad,
       • El rótulo de la muestra debe indicar la forma de muestreo (al azar, sistemático, número de submuestras/ha), análisis requerido, nombre del productor o de la empresa solicitante, lugar y superficie del lote muestreado, cultivo actual y cultivo anterior a la época de muestreo
         • Si las muestras van a almacenarse, deben conservarse idealmente en un sitio cuya temperatura oscile entre los 10-15 °C

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