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Karten in diesem Stapel (13)
- 1Principales tinciones citológicas e histoquímicas-Tricrómico de Gallego
-Tricrómico de Gomori
-Tinción de Mallory
-Giemsa
-Ácido peryódico de Schiff
-Tinción de Perls
-Tinción de Verhoeff
-Tinción de Wright
-Tinción de Papanicolaou
-Tricrómico de Masson
- 2Tricrómico de Gallego: Tinción que emplea tres colorantes para teñir: ~Núcleos en azul ~Fibras elásticas en magenta ~Eritrocitos en verde limón ~Otras estructuras en verde (Fortoul, 2013)Figura: corte de tendón, donde se observa colágeno teñido de verde y núcleos en azul-negro (Fortoul, 2013)
- 3Tricrómico de GomoriTricrómico de Gomori
La aplicación de la solución Tricrómico de Gomori puede teñir en forma diferenciada la fibrina, tejido muscular y citoplasmas celulares.
Después de teñir los núcleos con hematoxilina, se realiza un tratamiento con colorantes ácidos, que se diferencian por sus propiedades físico-químicas. El grado de permeabilidad es el factor mas importante de tincion que ofrecen las estructuras al paso de los colorantes empleados (SERGAS, 2006, P.182). - 4Tinción de Mallory Es un método selectivo, que usa varios colorantes ácidos, ya que tiñe determinadas estructuras tisulares. Permite observar: ~Núcleos, mielina y eritrocitos en rojo brillante ~Tejido conjuntivo, astrocitos, moco, amiloide, matriz osea, cartilaginosa y otras sustancias hialinas en diferentes tonos de azul ~Fibras elásticas en rosa (Fortoul, 2013; Geneser, 2014).Figura: corte de pulmón, se observa tejido conjuntivo y cartilago teñidos de tonos azul (Fortoul, 2013).
- 5GiemsaGiemsa
También conocida como Tinción de May-GrÜnwald-Giemsa, contiene la combinación de eosina y azul de metileno. Es utilizada en el estudio de lesiones linfoides. Es de gran utilidad por la marcación fina de cambios nucleares. El material extracelular como la matriz mixoide, colágeno mucina o coloide se tiñe con claridad.
Permite observar: Parásitos, Eritrocitos de color rosa pálido, Plaquetas con un color violeta, Neutrófilo, eosinófilo, basófilo, monocito y linfocito. (Popescu & Hayes, 2000, p.137)
- 6Ácido peryódico de Schiff Se emplea para determinar la presencia de macromóleculas ricas en hidratos de carbono como el glucógeno y las glucoproteínas, que se tiñen de color rojo magenta (Fortoul, 2013; Geneser, 2014) .Figura: corte de glomérulo. Se observa la membrana basal glomerular de los capilares glomerulares teñida como una delgada línea de color magenta (Fortoul, 2013).
- 7—Tinción de Perls
La tinción de Perls pone de manifiesto la presencia de hemosiderina en el citoplasma de los hematíes en sangre periférica o en médula ósea. Los siderocitos son hematíes que contienen uno o más gránulos de hemosiderina, también denominados gránulos sideróticos. Estos gránulos no se ven en frotis teñidos con tinciones panópticas y, para poder observarlos, es necesario realizar esta tinción con la que se tiñen de color azul turquesa. La presencia de gránulos sideróticos excluye la ferropenia. (Feliu, 2001, p.18)
- 8Tinción de Verhoeff Técnica que utiliza cloruro férrico, hematoxilina y yodo como colorantes. Las fibras elásticas y los núcleos celulares se tiñen de negro, las fibras de colágeno de rojo y otros elementos del tejido incluyendo el citoplasma se tiñen de amarillo. (Kanai,2013)Figura: Corte de la capa media de la aorta. (400x) Se observan las fibras de colágeno de color rojo.
(Fortoul, 2013)
- 9Figura: Plasmodium vivax dentro del eritrocito. Se puede observar al eritrocito teñido de color rosa mientras que el parásito presenta una coloración morada (Gil, s.f)Tinción de Wright
Se caracteriza por ser policromática. Proporciona una coloración púrpura a los núcleos de los leucocitos y a los gránulos neutrofílicos, mientras que los glóbulos rojos se tiñen de color rosado. Los componentes de la tinción de Wright son el azul B y la eosina Y.
Las estructuras ácidas absorben el azul B (colorante básico), mientras que las estructuras básicas absorben la eosina Y (colorante ácido).
(Gil, s.f)
- 10—Tinción de Papanicolaou
Técnica diferencial (policroma), que se deriva de los métodos de Mallory y Masson utilizados para la tinción de cortes histológicos. Esta técnica se desarrolló para observar los distintos estadios madurativos de las células pavimentosas vaginales, en estudios sobre el ciclo menstrual.
Esta técnica se realiza sobre todo tipo de muestras citológicas y se considera la tinción citológica por excelencia.
Se lleva a cabo en:
• Un baño colorante nuclear
• Dos baños colorantes citoplasmáticos
Esta tinción posee 3 colorantes:
a) La hematoxilina, que tiene afinidad por los elementos básicos.
b) El Orange G, que tiñe elementos ácidos
c) un policromo, que incluye a su vez tres colorantes: Eosina, verdeluz y pardo de Bismarck
(SERGAS, 2006, P.125)
- 11Figura: Corte transversal del conducto deferente. (100x). Se observa el colágeno teñido de verde azulado (Schencke & Del Sol, 2003)Tricrónico de Masson
Emplea tres colorantes, los cuales son la hematoxilina, la fucsina y el verde luz.., es muy útil para poner de manifiesto las fibras de colágeno, y el conectivo en general, en comparación células musculares o epitelios.
Esta tinción colorea al colágeno de verde azulado, al músculo de rojo/ marrón, a el citoplasma de rosado y a el núcleo de negro.
(Megías, Molist & Pombal, 2019)
- 12BibliografíaFeliu, Evarist. (2001). Esquemas clínico-visuales en Hematologia. España: Editorial Harcourt S.A.
Fortoul, T. (2013). Histología y biología celular. México: McGraw Hill Educación.
Geneser, F. (2014). Histología. México: Editorial Medica Panamericana. - 13Gil,M. (s.f). Tinción de Wright: fundamento, materiales, técnica y usos. Recuperado de: https://www.lifeder.com/tincion-de-wright/ Kanai,L. (2013). Medical Laboratory technology volume 3. USA:Tata McGraw Hill Education. Megías M, Molist P, Pombal MA. (2019). Atlas de histología vegetal y animal. Técnicas histológicas. Recuperado (fecha de consulta) de: http://mmegias.webs.uvigo.es/6-tecnicas/1-introduccion.phpPopescu, Paul & Hayes, Helene. (2000). Técnicas de citogénesis en animales. USA: Editorial INRA.
Ross, Michael & Pawlina, Wojciech. (2013). Histologia. Mexico: Editorial Panamericana S.A
Schencke, C. & Del Sol,M. (2003). Morfología del conducto deferente en el conejo. Morphol, 21(1), 15-21
SERGAS. (2006). Tecnico especialista en Anatomía Patológica. España: Editorial MAD
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- Karteikarten am Lab5, erstellt von Grupo 4 am 25/08/2020.
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