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Diagrama de flujo

Sin título

SANDRA LIZSETH CORTES MARTINEZ Español

Contenido del diagrama

  1. METODOS

  2. DIRECTOS

  3. INDIRECTOS

  4. Reconocen la respuesta inmune (humoral o celular) por parte del huésped:

  5. Detectan anticuerpos específicos antivirales por técnicas inmunológícas

  6. Western Blot

  7. Diagnostica cual es el agente especifico ante una infección

  8. Las proteínas virales son separadas mediante electroforesis en geles de poliacrilamida en condiciones desnaturalizantes y se colocan en membrana celulsa Una vez completada esta operación la proteínas de interés son reveladas por el agregado de un anticuerpo específico.

  9. Ejemplos:

    Rubeola

    Citomegalovirus

    Hepatitits A

  10. Inmunofluorescencia indirecta

  11. Enzimoinmunoanalisis

    Metodo de "Sandwich"

  12. Se incuba el suero paciente con células infectadas y no infectadas

  13. 1.Los Ag se inmovilizan sobre una base de pocillo o placa

    2. Se añade el suero de estudio

  14. 3. Se incuban

    4. Se revela antígeno presente reacción Ag - Ac

  15. 5. Se añade un segundo anticuerpo, generalmente policlonal, dirigido contra el antígeno

    6.Se añade un tercer anticuerpo, dirigido contra el segundo anticuerpo, marcado con enzima

  16. 7.Se añade sustrato (incoloro)

    8.Actúa enzima sobre sustrato

    Aparece color se puede medir intensidad (colorímetro)

  17. Se realiza un lavado con buffer PBS y se agrega un Ac antiIgG humano conjugado con isoticianato de floreceina que se vuelve fluorescente y se une a los Ac si la reacción es positiva

  18. Se pone en contacto a la muestra que contiene el antígeno del organismo bajo estudio y a un anticuerpo monoclonal con fluoresceína dirigido contra dicho organismo

  19. Enzimoinmunoanalisis

    Directa

  20. Inmunofluorecencia

    Directa

  21. Si se encuentra presente el Ag entonces se formara complejo antígeno-anticuerpo

  22. Antígeno propio de la membrana celular o partículas insolubles son aglutinadas directamente

  23. Test de aglutinación

  24. Mezcla de antisuero con sangre y observcion de la presencia de aglutinción

  25. Fijación al soporte insoluble de antígenos específicos.

    Lavado para eliminar los antígenos fijados deficientemente o no fijados.

  26. Adición de un substrato sobre el que sea capaz de actuar la enzima marcadora. Lectura visual o colorimétrica del producto final coloreado.

  27. Adición de anticuerpos marcados con una enzima; si los anticuerpos reaccionan con los antígenos, el complejo quedará solubilizado.

    Lavado para eliminar los anticuerpos marcados que no hayan reaccionado.

  28. Cámara de recuento de Petroff Hauser

  29. Brock, D. Clínica y Diagnóstico Microbiológico. Biología de Microorganismos. Prentice Hall, 1988. New Jersey. 13: 488-489.

    Zinsser (ed.). Diagnóstico Viral Rápido. Microbiología. 20ed. Editorial Médica Panamericana. 1994; 62: 1249-1260.

  30. Solo sirve para suspenciones concentradas

    En bacterias moviles hay que inmovilizarlas con mezcla de alcohol

  31. Método Rápido

  32. La muestra se distribuye en 16x25=400 celdillas

  33. Catadores electronicos de partículas tipo Colter

  34. Recuentos de viables en placa

  35. Siembras pequeñas en Placas de Petri con medio slido

  36. Cada célula viable dara origen a una colonia visible despues del tiempo adecuado de incubacion

  37. Numero de celulas viables facil de ver

  38. Recuento Sobre Filtros

  39. Distincion entre celulas muertas y vivas

  40. Suspenciones diluidas de bacterias

  41. se pasa gran volumen de suspencion en :

    Membrana de nitrocelulosa

    Naylon esteril

  42. El filtro se deposita sobre un cultivo solido

  43. suspension microbiana

  44. tubo cpilar

  45. 2 polos de corriente electrica

  46. en un orificio de 30mm de diametro

  47. una particula y se interrumpe la corriente

  48. se recoge por un dispositivo de registro electronico

  49. detecta el numero y tamano de las particulas

  50. el tamano detectado es funcion de la intensidad del pulso de la particula.

  51. libre de particulas pequeñas

  52. erroneamente se contabilizan como bacterias chicas

  53. pueden obstruir el orificio del aparato

  54. Agar SPC

  55. Agar EMB

  56. agar McConkey

  57. este medio se utiliza para el aislamiento de bacilos Gram negativos de facil desarrollo. aerobios, anaerobios facultativos

  58. aislamiento de enterobacterias

  59. medio de cultivo recomendado para el recuento de bacterias aerobicas en agua, aguas residuales, productos lacteos y otros alimentos.

  60. serologia

  61. deteccion de anticuerpos circuares especificos se relaciona en el suero del paciente. son utiles y practicas en la parasitosis hemotesidual y en la micosis profunda.

  62. Parasitosis: Toxoplasmosis, toxocariosis, cisticercosis

  63. Micosis

    Histoplasmosis, aspergilosis

  64. Coloraciones

  65. Se observan las caracteristicas morfoloficas de los protozoarios

  66. Se detecta su movilidad

  67. El examen de los frotis se observa con aumento al 100x

  68. Prueba de la catalasa

  69. El reactivo utilizado es el peroxido de hidrogeno al 30%

  70. se pone e el portaobjetos , se toma la bacteria a partir de una colonia aislada

  71. Si hay burbujeo significa que hay producción de oxigeno

  72. Prueba de la oxidasa

    Sore papel de filtro

  73. Colorantes cromogenos

  74. Actuan como aceptadores artificiales de electrones sustituyend al oxigeno

  75. Tetrametil -p- fenilendiamina

  76. Dimetil -p- fenilendiamina

  77. Es incoloro y al estar en contacto con citocromo C se pone morado si es positivo

  78. Se agrefa2-3 gotas del reactivo de Kovacs

  79. C ultivo

  80. Procedimiento rutinario para la mayoria de las infecciones bacterianas y fungicas

  81. Usada raramente para identificar helmintos y protozoos

  82. Su éxito depende de técnicas apropiadas de recolección y y selección de un medio de cultivo adecuado

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Descripción
Diagrama sobre Sin título, creado por SANDRA LIZSETH CORTES MARTINEZ el 02/09/2017.
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