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Diagrama de flujo

Sin título

Dome Padilla Español

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Contenido del diagrama

  1. tincion de gota fresca

  2. fase preanalitica

  3. fase analitica

  4. fase postanalitica

  5. material necesario

  6. Poner sobre un portaobjetos una gota de agua y una pequeña alícuota de un

    cultivo bacteriano

     Hacer el frotis, formando una película homogénea sobre el portaobjetos Dejar secar.

     Fijar la preparación, pasando a través de la llama del mechero el portaobjetos.

     Cubrir con unas gotas de cristal violeta durante 1 minuto.

     Añadir el mordiente lugol, solución de yodo-ioduro potásico, durante 1 minuto.

     Lavar el exceso de mordiente con agua.

     Lavar la preparación con alcohol formando un ángulo con la preparación,

    durante 30 segundos

  7. se evalua

  8. Cultivos de bacterias gram positivas: Bacillus cereus y gram negativas: Escherichia

    coli, frasco lavador, cristalizador, soporte, portaobjetos, asa de siembra, cristal violeta,

    safranina, lugol y alcohol, aceite de inmersión

  9. Lavar inmediatamente con abundante agua.

     Cubrir con el colorante de contraste, safranina durante 1 minuto.

     Lavar el exceso de colorante con agua.

     Dejar secar al aire.

     Añadir una gota de aceite de inmersión.

     Observar con objetivo de inmersión (100 x).

  10. bacterias gram positivas mantienen y conservan el complejo cristal violeta-iodo, las

    bacterias gram negativas se decoloran rápidamente con la aplicación del alcohol,

    admitiendo el colorante de contraste que proporciona un color entre rosa y rojo que

    contrasta con el intenso color violeta

  11. Sin título
  12. urocultivo antibiograma

  13. fase preanalita

  14. fase analitica

  15. fase postanalitica

  16. Elementos necesarios:

    Guantes estériles.

    Jeringas y butterfly o agujas estériles

    Iodopovidona, o alcohol iodado.

    Alcohol 70%.

    Frascos para la recolección de las muestras.

    (Elegir el frasco adecuado según tipo de paciente o situación clínica.)

  17. La orina remitida al laboratorio se homogeniza convenientemente y se

    divide en dos partes, una sirve para el estudio del sedimento y, la otra, para el

    urocultivo. A partir del sedimento obtenido por centrifugación a 2500 rpm.

    Durante 10 minutos, se hace una observación en fresco entre porta y cubre, que

    orienta sobre el número de microorganismos presentes en la orina, y un frotis, que

    se colorea por el método de Gram.

  18. El resultado se

    expresa en forma de UFC/ (unidades formadoras de colonias) mL de orina. Cada

    colonia representa al menos una bacteria en la orina original. Se requieren 24-48 h

    más para identificar el germen y conocer el antibiograma

  19. Sin título
  20. Actividades previas:

    LAVARSE LAS MANOS con antiséptico y secarlas con toalla descartable.

    Rotular el frasco con los datos del paciente en el lugar indicado para ello.

    Si tuviera código de barras: NO pegar tela adhesiva sobre el mismo

    Retirarl el sticker y pegarlo en el protocolo de pedido.

    Quitar la tapa protectora del frasco (plástica) y desinfectar con alcohol 70% el tapón de goma.

    Limpiar la piel del paciente con alcohol 70%. Dejar secar. Palpar la vena a punzar.

  21. Antes de establecer el tratamiento de una enfermedad de etiología

    microbiana, es conveniente efectuar un antibiograma, es decir, un estudio de la

    sensibilidad del germen productor de la infección a los antimicrobianos.

  22. Un microorganismo se considera resistente a un antibiótico cuando la

    concentración máxima de antimicrobiano que se puede conseguir en el lugar de la

    infección (líquidos, tejidos o suero) no es suficiente para afectarle, o, dicho de otra

    forma, que la concentración de la droga en aquel punto es inferior a la CMI

    necesaria para eliminar el germen, y que por efectos secundarios tóxicos es

    imposible elevar la dosis.

  23. EMO

  24. Fse preanalitica

  25. fase analitica

  26. fase post analitica

  27. La recolección de la muestra de orina se realiza en la

    primera micción de la mañana; la bolsa recolectora, la punción

    supra-púbica (1) y el cateterismo vesical (2) son los métodos

    recomendados en los menores de 2 años cuando aún no hay

    control de esfínteres (3), mientras que la recolección por

    micción espontánea es el método aconsejado para los mayores

    de 2 años

  28. Lavar el área genital y perineal del paciente con suficiente

    agua y jabón momentos antes de la toma de la muestra. No

    utilizar antisépticos (3,7,8).

    Tener listo el frasco recolector de orina, sin uso, estéril

    (2) y sellado.

    Tomar la muestra de orina a partir del chorro medio (9)

    descartando la primera parte de la micción. La orina

    recolectada en el frasco no debe ser tocada ni por los dedos

    ni por ningún otro objeto.

    Recolectar un volumen de orina suficiente para su estudio

    —10cm mínimo

  29. Evitar que la orina rebose el frasco, el rebosamiento facilita

    su contaminación (10).

    Sellar inmediatamente el frasco una vez recolectada la orina

    y rotularlo con el nombre del paciente, número de historia

    clínica, hora y fecha de recolección.

    Conservar el frasco en un lugar seguro, evitando la exposición

    solar y los movimientos constantes —agitación

  30. Procesar la muestra en el laboratorio clínico lo más pronto. Si

    después de 30 minutos de recolectada no se procesa, se debe

    refrigerar en la puerta de la nevera a 4 grados centígrados (11)

    por un tiempo máximo de 24 horas

  31. fisico

  32. quimico

  33. Aspecto: la orina es límpida y transparente (11). Existe

    turbidez por presencia de células, cristales, cilindros,

    detritus, proteínas, grasas y moco en las muestras de orina

  34. Color: el color de la orina es ámbar-amarillo (18),

    dado por la presencia del pigmento urocromo

  35. Rojo: en hematuria no glomerular, hemoglobinuria,

    mioglobinuria, uso rifampicina e infecciones por Serratia

    marcescens.

    Café oscuro: en melanuria, hemorragia antigua y hematuria

    glomerular.

    Amarillo verdoso: en síndrome ictérico y hepatitis.

    Verde azulado: en infección por Pseudomona aeruginosa

    Blanco lechoso: en síndrome nefrótico.

    Vino tinto: en porfiria

  36. Olor: el olor de la orina es débilmente aromatizado

    debido a la presencia de ácidos orgánicos volátiles y

    amoniacal por descomposición de la urea (

  37. Fruta dulce: diabetes mellitus.

    Azúcar quemada: leucinosis.

    Ratón: fenilcetonuria.

    Pescado: hipermetionemia.

    Sudor de pies: aciduria por ácido butírico o hexanoico

  38. pH: el pH urinario varía de 4.5 a 8

  39. La orina es alcalina cuando su pH es mayor a 6.5 (16), como

    sucede en dietas vegetarianas, ingesta de diuréticos, alcalosis

    respiratoria, vómito, acidosis tubular renal distal o tipo I y

    en aquellos casos donde la urea se convierta en amoníaco

    y aumente el pH —como sucede en las orinas procesadas

    tardíamente y en las infecciones por Proteus spp, productor

    de amoniaco gracias a la acción de la ureasa

  40. pH menor a 6 se

    considera ácida y se da por dietas hiperproteicas, ceto-acidosis

    diabética, infecciones por E. Coli, fiebre, acidosis respiratoria,

    aciduria por ácido mandélico y fosfórico, administración de

    fármacos como anfotericina B, espironolactona y Aines

  41. densidad urinaria

  42. su valor varía durante todo el día oscilando

    entre 1.003-1.030g/l (16,19,20), siendo mayor a 1.020 en

    la mañana debido a la restricción de líquidos durante la

    noche. Los recién nacidos y los lactantes pueden tener una

    densidad urinaria entre 1.005-1.010g/l y los niños mayores

    1.010-1.025g/l

  43. osmolaridad

  44. sus valores varían entre 50-1200mOsm/Kg y su rango normal

    es de 500-850.

  45. nitritos

  46. Nitritos: su valor en orina debe ser cero (15). Es un método

    indirecto para determinar la presencia de bacterias en la orina

    (18). Las enterobacterias como la E. Coli tienen la particularidad

    de reducir los nitratos a nitrito

  47. proteinas

  48. Proteínas: normalmente no se deben reportar proteínas

    en la orina; su valor debe ser menor a 4mg/m2/hora.

  49. Sin título
  50. glucosa

  51. Glucosa: se detecta a través de la reacción de la glucosa

    oxidasa/peroxidasa (11). La lectura de glucosuria debe ser cero

    porque la glucosa filtrada es reabsorbida casi en su totalidad

    (99.9%) en el túbulo contorneado proximal y solo aparece en

    la orina cuando el valor de la glicemia supera el umbral renal

    tubular de reabsorción de glucosa estipulada entre 160-180mg/

    dl o cuando hay daño en el túbulo proximal renal

  52. cetonas

  53. Cetonas: su lectura debe ser cero; la presencia de cetonuria

    está relacionada con alteraciones en el metabolismo de los

    ácidos grasos y de los carbohidratos

  54. urobirinogeno

  55. encuentra normalmente en concentraciones bajas, alrededor de

    1mg/dl (

  56. bilirrubina

  57. Bilirrubinas: su lectura es negativa (15). Cuando se

    presenta bilirrubina en la orina es conjugada o directa, ya que

    por ser hidrosoluble pasa el glomérulo renal, l

  58. sangre

  59. lgunas patologías presentes en los niños y que pueden

    cursar con hemoglobinuria son las anemias hemolíticas, el

    déficit glucosa 6 fosfato deshidrogenasa, la hemoglobinuria

    paroxística nocturna, el paludismo, las infecciones y los

    infartos renales

  60. microscopico

  61. Para el análisis microscópico se consideran como

    componentes del sedimento urinario las células, los cilindros

    y los cristales.

  62. Sin título
  63. Sin título

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Descripción
Diagrama sobre Sin título, creado por Dome Padilla el 03/01/2022.
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Dome Padilla
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