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Description
Flashcards by Maite Castellanos, updated more than 1 year ago
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Created by Maite Castellanos
over 3 years ago
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| Question | Answer |
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-Tinciones Citológicas e Histoquímicas-
(Grupo 5, Sección B )
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Foto1 (binary/octet-stream)
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"Tinción de Papanicolau" Colorantes empleados: Hematoxilina de Harris (EA50, EA65, EA36), Naranja G, Eosina.La tinción de Papanicolau es un examen basado en la coloración de smears en general (vaginal, cervical, prostático) o para fluídos corporales (peritoneal, pleural, gástrico, urinario, espinal, etc.) Permite observar • Núcleos en azul • células acidófilas de rosa rojo a naranja • células basófilas verde o azul verdoso • células o fragmentos de tejido impregnados de sangre en naranja o naranja verdoso. Muestra: Coilocitos con núcleos atípicos (40x) |
| “Tricrómico de Masson” Es una de las técnicas más comunes,se emplean tres colorantes para teñir distintos componentes en diversos colores, se utilizan para poner en manifiesto fibras de sostén o diferenciar el tejido conjuntivo de las fibras musculares,esta técnica requiere fijación o posfijación en Bouin y nos permite observar : • Núcleos en negro,Músculo, • citoplasma y queratina en rojo. • Colágena en azul o verde dependiendo del contraste que se use. Muestra: corte de piel (40 x) . | “Tricrómico de Gallego” Se emplean tres colorantes para teñir distintos componentes en diversos colores, este método pone en manifiesto la arquitectura general, resaltar las fibras de sostén o diferenciar el tejido conjuntivo de las fibras musculares. El tricrómico de Gallego nos permite observar: • Núcleos en azul. • Fibras elásticas en magenta. • Eritrocitos en verde limón. • Otras estructuras en verde. Muestra:Corte de piel humana (1000x) |
| “Tricrómico de Gomori” Se emplean tres colorantes para teñir distintos componentes en diversos colores, se usa tanto para tejidos como para extendidos celulares y se visualizan: • Fibras musculares en rojo. • Colágeno en verde. • Núcleos de azul a negro. • Fibras elásticas, células β de los islotes pancreáticos y los gránulos de la hipófisis, en tonos que van desde el violeta hasta el morado. Muestra: Tejido muscular (1000x) | “Tinción de Verhoeff” Se emplean tres colorantes para teñir distintos componentes en diversos colores, se utiliza para fibras elásticas, nos permite ver: • Fibras elásticas negras. • Núcleos en negro. • Colágeno en rojo. • Otras estructuras en amarillo. Muestra: Fibras elásticas de arteria elástica (aorta) (40x) |
| “Tinción de Mallory” En esta técnica de tinción se utilizan varios colorantes, todos ácidos, que tiñen distintas estructuras tisulares. Se desconoce el fundamento químico de la unión entre los colorantes, por lo que estos métodos no son específicos en cambio, se denominan selectivos, ya que tiñen determinados componentes tisulares. Este método nos permite observar: • Núcleos, mielina y eritrocitos en rojo brillante. • Tejido conjuntivo, astrocitos, moco, amiloide, matriz ósea, cartilaginosa y otras sustancias hialinas en diferentes tonos de azul. • Fibras elásticas en rosa. Muestra: Tejido conjuntivo (400x) | “Giemsa” Esta técnica de tinción reacciona con diferentes componentes de los tejidos, tiñéndolos en diferente color al del colorante que originalmente había sido utilizado, contiene la combinación de eosina y azul de metileno. Nos permite observar: • Núcleos en azul. • Eritrocitos en rojo. • Cromatina y glóbulos blancos en morado. • Gránulos de eosinófi los en rosa. • Gránulos de neutrófilos en morado. • Bacterias en azul oscuro. • Núcleos de parásitos protozoarios en rojo. • Citoplasma basofílico en linfocitos y monocitos; para los protozoarios en azul. Muestra: Células sanguíneas (100x) |
| “Wright" Esta coloración es conocida como policromática debido a que produce varios colores. Es una solución de alcohol metílico de un colorante ácido (eosina) y otro básico (azul de metileno). Nos permite observar: • Núcleos en azul. • Eritrocitos en rojo. • Cromatina y glóbulos blancos en morado. • Gránulos de eosinófi los en rosa. • Gránulos de neutrófilos en morado. • Bacterias en azul oscuro. • Núcleos de parásitos protozoarios en rojo. • Citoplasma basofílico en linfocitos y monocitos; para los protozoarios en azul. Muestra: Células sanguíneas (100x) | Ácido peryódico de Schiff Utiliza PAS, ácido peryódico de Schiff, o leucofucsina, un colorante incoloro, pero que se torna rojo estable al contacto con los grupos aldehídos. Esta técnica permite la tinción de componentes celulares que contienen hidratos de carbono. Algunos de sus usos son: 1. Demostración de fibras reticulares y membranas basales. 2. Demostración de hongos. 3. Demostración de ciertos tipos de mucosustancias secretadas por el epitelio de varios órganos del tracto digestivo, respiratorio y genital femenino (cérvix). Muestra: Glandula Sublingual (1000x) |
| “Método de perls” El método de Perls presenta Hierro en azul de Prusia o presenta un fondo rosa-rojo, esta técnica se utiliza para demostrar hemosiderina, el cual es un producto de la degradación de la hemoglobina. Esta técnica de tinción nos permite observar: • Presencia de hemoglobina. Muestra: Biopsias de médula osea células cargadas de hemosiderina (1000x) | Referencias Bibliográficas. -Fotoul, A. (2012). Histología y biología celular. México: McGraw Hill. Geneser, F. (2000). Histología. Buenos Aires: Editorial Médica Panamericana. Martìn, I. (2018). Atlas de histología humana. Recuperado de: https://histologia2.files.wordpress.com/2018/07/atlas-de-histologc3ada-humana.pdf |
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