SECRECION OCULAR

SECRECION OCULAR

PATOLOGIAS FRECUENTES
1. Conjuntivitis
  1. Estado inflamatorio de la conjuntiva, con hiperemia conjuntival (dilatación de los vasos sanguíneos) o con hemorragia subconjuntival.
    1. No gonocócica
      1. Ocasionada frecuentemente por S. aureus, S. pneumoniae y H. influenzae biogrupo aegyptius, Moraxella lacunata.
    2. Gonocócica
      1. Producida por N. gonorrhoeae, afecta principalmente a los adultos que se contagian por un contacto sexual o por autoinoculación (genital-mano-ojo).
    3. De inclusión
      1. Causada por Chlamydia trachomatis serotipos D hasta la K, se produce en los adultos por autoinoculación y en los neonatos durante el paso por el canal de parto infectado.
    4. Alérgica
      1. Producida por una reacción de hipersensibilidad tipo I o anafiláctica frente a determinados antígenos, como pólenes que son transportados por el aire.
    5. Crónica
      1. Se caracteriza por exacerbaciones y remisiones durante meses o años, puede presentarse hiperemia conjuntival con secreción acuosa, mucoide o sin ella.
    6. Tracoma
      1. Conjuntivitis crónica producida por C. trachomatis serotipos, cursa con hipertrofia folicular conjuntival, neovascularización corneal que pueden conducir a una pérdida irreversible de la visión.
2. Queratitis
  1. Inflamación de la córnea producto de la aplicación de medidas quirúrgicas con fines curativos, tambien puede ser caausada por Pseudomonas aeruginosa, S. aureus o Streptococcus del grupo viridans, levaduras como Candida albicans.
3. Blefaritis
  1. Inflamación del borde palpebral con hiperemia, engrosamiento y formación de escamas o costras o úlceras superficiales.
    1. Staphylococcus aureus
4. Orzuelo
  1. Induración redondeada y dolorosa localizada en el folículo de la pestaña o en una o más glándulas de Zeis, Moll o de Meibomio.
    1. Staphylococcus aureus
CONSIDERACIONES PREANALÍTICAS
1. SOLICITUD DE ANALISIS
  1. Nombres y apellidos del paciente
  2. Edad del paciente
  3. Número de historia clínica
  4. Diagnóstico previo
  5. Código y firma del facultativo que realiza la peticioón
  6. Código de destino
  7. Determinaciones analíticas que se solicitan
2. INDICACIONES PREVIAS
  1. No aplicarse tratamientos tópicos.
  2. No estar recibiendo tratamientos antimicrobianos
  3. No lavarse los ojos para el momento de la obtención de la muestra.
  4. No usar lentes de contacto
3. TOMA DE MUESTRA
  1. 1. Verificar los datos del paciente
  2. 2.Verificar condiciones de aceptación o rechazo de pacientes.
  3. 3. Incación del procedimiento al paciente.
  4. 4. Rotular el material a emplear para la recolección de la muestra, frente al paciente.
  5. 5. Colocar al paciente bajo una buena fuente de luz.
  6. 6. Llimpiar posibles restos de pus o secreciones del conducto auditivo externo con hisopo humedecido en solución fisiológica estéril y descartar.
  7. 7.Humedecer dos hisopos en solución salina fisiológica estéril y rotar suavemente cada hisopo en el ángulo interno del ojo
  8. 8.Con un hisopo hacer un frotis circular no mayor a un cm, de diámetro en una lámina portaobjeto.
  9. 9. El otro hisopo se colocará en un medio de transporte adecuado.
CONSIDERACIONES ANALITICAS
1. Tinción de Gram,
  1. Tinción diferencial, que permite observar y clasificar la bacterias segun su coloración en gram positivas y gram negativas.
    1. Observar la presencia de células epiteliales y microorganismos intra o extracelulares, presencia de células inflamatorias.
2. Tinción de Hansel
  1. Permite la investigación de polimorfonucleares eosinófilos, que orientan a un proceso alérgico
3. Tinción de Giemsa
  1. Para la observación de cuerpos de inclusión intracitoplasmáticos, sugestivos de infección clamidial.
4. Cultivo
  1. Proceso de crecimiento de microorganismos mediante la toma de bacterias de un sitio de infección por métodos de recolección de muestra y crecimiento en un ambiente artificial en el laboratorio ( in vitro).
    1. Cultivar cada ojo por separado en una misma placa AS y ACHs
    2. Incubar a 36 °C, bajo condiciones microaerófilas por 24 h hasta 72 h.
    3. Revisar los cultivos cada 24 horas, hasta las 72 horas
    4. Inspeccionar las placas de AS y ACH, estimar el número de cada microorganismo en cada placa.
    5. El desarrollo de moderado o abundante crecimiento bacteriano, tercer o cuarto cuadrante de la placa respectivamente, podría indicar una etiología bacteriana de la infección
    6. Al crecimiento de escasas colonias de algún patógeno, se le debe dar importancia.
5. Exámen en fresco con Solución Salina Fisiológica
  1. Se emplean para observar la movilidad, tamaño, forma de agrupación de los microorganismos en su estado natural.
    1. Colocar una gota de secreción mas una gota de solución salina.
    2. Cubrir con un cubreobjetos y proceder al análisis microscópico
CONSIDERACIONES POS ANALÍTICAS
1. Los resultados que se pueden reportar al analizar una muestra de secreción ocular, dependiendo de técnica usada pueden ser:
  1. Exámen en fresco con Solución Salina Fisiológica
    1. Se puede reportar por campo las siguientes estructuras
      1. Bacterias
      2. Leucocitos
      3. Células epiteliales
      4. Esporas
      5. Levaduras
  2. Tinción de Gram
    1. Describir la morfología de todos los microorganismos con significancia clínica.
      1. Así mismo, registrar si los microorganismos se encuentran intra o extracelularmente y la presencia de células inflamatorias.
  3. Tinción de Hansel
    1. Reportar los eosinófilos presentes por campo
  4. Tinción de Giemsa
    1. Los hallazgos positivos se reportan: “Se observaron cuerpos de inclusión sugestivos de Chlamydia trachomatis”.
  5. Cultivo
    1. Reportar la cantidad (escasa, moderada o abundante) del microorganismo aislado en cultivo puro o aquel que se le haya dado valor por su crecimiento predominante.
      1. Si están presentes microorganismos indígenas que son contaminantes para el caso, incluir el siguiente comentario:
        “Presencia de microbiota indígena conjuntival” o “Desarrollo de microbiota habitual de la región”.

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