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Fluxograma

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Eleonor Rojas Saenz Espanhol

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Conteúdo do fluxograma

  1. MEDIOS DE CULTIVO

  2. Uno de los sistemas más importantes para la indentificacaón de microorganismos es

  3. Observar su crecimiento en sustancias alimenticias artificiales.

  4. Para que las bacterias crezcan adecuadamente en un medio de cultivo, sus condiciones son:

  5. Temperatura

  6. Grado de humedad

  7. Presión de oxígeno

  8. Acidez o alcalinidad

  9. Nutrientes y factores de crecimiento

  10. Sem título
  11. Disponibilidad de nutrientes adecuados

  12. Un medio de cultivo adecuado para la investigación microbiológica ha de contener:

  13. Carbono, Nitrógeno, Azufre, Fósforo y Sales inorgánicas

  14. En muchos casos serán necesarias ciertas vitaminas y otras sustancias inductoras de crecimiento.

  15. Consistencia adecuada del medio

  16. Partiendo de un medio líquido podemos modificar su consistencia añadiendo productos como:

  17. Albúmina, gelatina o agar, con lo que obtendríamos medios en estado semisólido o sólido.

  18. Actualmente los medios sólidos son de uso universal, por su versatilidad y comodidad.

  19. Presencia (o ausencia) de oxígeno y otros gases

  20. Gran cantidad de bacterias pueden crecer en una atmósfera con tensión de oxígeno normal.

  21. Algunas pueden obtener el oxígeno directamente de variados sustratos.

  22. Los microorganismos anaerobios estrictos sólo de desarrollarán adecuadamente en una atmósfera sin oxígeno ambiental.

  23. Condiciones adecuadas de humedad

  24. Un nivel mínimo de humedad, tanto en el medio como en la atmósfera

  25. Es imprescindible para un buen desarrollo de las células vegetativas microbianas en los cultivos.

  26. Hay que prever el mantenimiento de estas condiciones mínimas en las estufas de cultivo a 35-37°

  27. Luz ambiental

  28. La mayoría de los microorganismos crecen mucho mejor en la oscuridad que en presencia de luz solar.

  29. Hay excepciones evidentes como sería el caso de los microorganismos fotosintéticos.

  30. Sem título
  31. pH

  32. La concentración de iones hidrógenos muy importante para el crecimiento de los microorganismo.

  33. La mayoría de ellos se desarrollan mejor en medios con un pH neutro

  34. La presencia de ácidos o bases en cantidades que no impiden el crecimiento bacteriano

  35. Temperatura

  36. Los microorganismos mesófilos crecen de forma óptima a temperaturas entre 15 y 43°C.

  37. Los psicrófilos crecen a 0°C y los temófilos a 80°C o incluso a temperaturas superiores (hipertemófilos).

  38. Los patógenos humanos crecen en rangos de temperatura mucho más cortos, alrededor de 37°C

  39. Esterilidad del medio

  40. Los medios de cultivo tienen que estar perfectamente estériles para evitar la aparición de formas de vida que puedan alterar o incluso impedir el crecimiento microbiano normal

  41. El sistema que más se lleva a cabo es el autoclave, se utiliza vapor de agua a presión como agente esterilizante.

  42. Tipos básicos de medios de cultivo

  43. En su estado físico

  44. Líquido

  45. Semisólido

  46. Sólido

  47. No tiene agar

  48. Contiene agar menor al 5%

  49. Contiene agar por encima de un 15%

  50. Estado sólido

  51. Estado líquido

  52. Las células que se multiplican no cambian su localización

  53. Se utiliza para obtener bacterias aisladas por la formación de colonias sobre la superficie

  54. El más utilizado es llamado caldo nutritivo, compuesto principalmente de extracto de carne, peptona y agua.

  55. Se utiliza fundamentalmente cuando se pretende la obtención de una suspensión bacteriana de una determinada concentración

  56. Se diferencia porque tiene una sustancia de sostén, que puede ser agar-agar

  57. Medios semisólidos

  58. Se preparan a partir de los medios líquidos, agregando a éstos un agente solidificando menor para preparar medios sólidos.

  59. Uno de sus usos es la investigación de la movilidad de las bacterias

  60. Según su utilización

  61. Medios comunes

  62. Poseen los componentes mínimos para que pueda producirse el crecimiento de bacterias que no necesitan requisitos especiales.

  63. El medio más conocido es el agar nutritivo o agar común

  64. Medios de enriquecimiento

  65. Incorporan una serie de factores indispensables para el crecimiento de microorganismos exigentes.

  66. Este enriquecimiento se hace por adición de sangre u otros productos biológicos.

  67. En ocasiones es posible añadir suplementos artificiales a los enriquecimiento del mismo.

  68. Medios selectivos

  69. Son utilizados para favorecer el crecimiento de ciertas bacterias contenidas en una población polimicrobiana.

  70. Su fundamento consiste en facilitar nutricionalmente el crecimiento de una población microbiana específica.

  71. Ejemplo:

  72. El caldo selenito, que se utiliza para favorecer el crecimiento de salmonellas y frenar el resto de enterobacterias

  73. Medios inhibidores

  74. Se consideran como una variante más restrictiva de los medios selectivos.

  75. Se consiguen habitualmente por adición de sustancias antimicrobianas con desarrollo de una población determinada.

  76. Un medio inhibidor es el MacConkey, permite el crecimiento de los gérmenes Gram negativos e impide el crecimiento de los Gram positivos.

  77. Medios diferenciales

  78. Se utilizan para poner en evidencia características bioquímicas que ayuden a diferenciar géneros o especies.

  79. La adición de un azúcar fermentable o un sustrato metabolizable se utilizan para este fin.

  80. Medios de identificación

  81. Comprueban alguna cualidad específica que puede servirnos para reconocer la identidad de un microorganismo.

  82. Poseen los medios necesarios para asegurar el crecimiento de los microorganismos

  83. El sustrato específico que vaya a ser metabolizado y el indicador que nos muestre el resultado.

  84. Medios de multiplicación

  85. Sirven para obtener una gran cantidad de células a partir de un microorganismo ya aislado.

  86. Se emplean en la obtención de vacunas, en la investigación y en la industria.

  87. Los medios más adecuados para la multiplicación suelen ser líquidos.

  88. Medios de conservación

  89. Se utilizan para conservar una cepa que, por diversas razones nos interese mantener.

  90. Se utilizan como controles de calidad de las pruebas y reactivos utilizados en el laboratorio de microbiología.

  91. Medios de transporte

  92. Se usan para el transporte de muestras clínicas que no pueden sembrarse inmediatamente.

  93. Su utilización debe hacerse introduciendo la torunda con la que se obtuvo la muestra en el interior del medio.

  94. Atendiendo su composición

  95. Medios complejos

  96. Se preparan a partir de tejidos animales, y más raramente vegetales.

  97. Su composición no es exactamente definida, y por lo consiguiente no es rigurosamente constante.

  98. Medios sintéticos

  99. Contienen en su composición sustancias químicas conocidas y disueltas en agua destilada

  100. El agua destilada tiene que ser en proporciones determinadas, resultando un medio de composición perfectamente definida.

  101. Medios semisintéticos

  102. Existe un gran número de factores de crecimiento exigidos para ciertos gérmenes

  103. Esto hace que la fabricación de un medio sintético para estos gérmenes sea imposible o demasiado cara.

  104. Algunos cultivos comunes

  105. Agar nutritivo

  106. Se utiliza normalmente como rutina para todo tipo de bacteria.

  107. Contiene normalmente (w/v):

    - 0.5% Peptona

    - 0.3% Extracto de carne/ extracto de levadura

    - 1.5% agar

    - 0.5% NaCl

    - Agua destilada

    - pH casi neutro

  108. Agar sangre

  109. Se utiliza para el crecimiento de estreptococos

  110. Para su preparación se puede utilizar el agar nutritivo enriquecido con cloruro sódico o un preparado enriquecido con otras sustancias como Columbia o el tripticase de soja

  111. Agar C.L.E.D

  112. Cistina Lactosa Electrólito Deficiente

  113. Esta recomendado para el recuento e identificación presuntiva de los microorganismos de las vías urinarios.

  114. Agar S.S

  115. Medio de cultivo utilizado para el aislamiento de Salmonella spp. y de algunas especies de Shigella spp.

  116. A partir de heces, alimentos y otros materiales en los cuales se sospecha su presencia.

  117. Agar Hektoen

  118. Se utiliza para facilitar el aislamiento de las enterobacterias.

  119. La presencia de tres azúcares (lactosa, sacarosa y salicilina) permiten ampliar el poder diferencial de este medios

  120. Agar McConkey

  121. Se utiliza para el aislamiento de bacilos gram negativos de fácil desarrollo, aerobios y anaerobios facultativos.

  122. Permite diferenciar bacterias que fermentan lactosa de las no fermentadoras en muestras clínicas, de agua y alimentos.

  123. Contiene sales biliares y cristal violeta, lo que inhibe el crecimiento de bacterias gram positivas.

  124. Agar tripticase de soja

  125. Es utilizado para el crecimiento de gérmenes exigentes como Brucella, Neisseria o Streptococcus.

  126. Es un medio muy enriquecido, pero no es diferencial.

  127. Tiene un bajo potencial redox que, al aumentar, se manifiesta por un color rosa en medio.

  128. Agar Chapman o manitol salino

  129. Permite el crecimiento de un determinado grupo de bacterias mientras que inhibe el crecimiento de otras.

  130. Es capaz de distinguir los microorganismos patogénicos en un corto periodo de tiempo.

  131. Contiene una alta concentración de 7.5%-10% de sal (NaCl), haciéndolo selectivo para Staphylococci y Micrococcaceae debido a que el nivel de sal es inhibitorio para la mayoría de las bacterias.

  132. Tiene la siguiente composición:

    5.0 g/L enzima digestiva de caesina.

    5.0 g/L enzima digestiva de tejido animal.

    1.0 g/L extracto de carne de vaca.

    10.0 g/L D- manitol

  133. Pruebas bioquímicas

  134. Consiste en distintos test químicos aplicados a medios biológicos

  135. Al conocer su reacción, nos permite identificar distintos microorganismos presentes.

  136. Su sistema de funcionamiento consiste en determinar la actividad de una vía metabólica

  137. Prueba de la coagulasa

  138. Prueba de la catalasa

  139. Permite separar Staphilococcus aureus, que produce la enzima coagulasa, de las otras especies de estafilococos que se denominan coagulasa negativos.

  140. Su técnica varía según la coagulasa investigada

  141. Coagulasa ligada y libre

  142. Se encuentra en la mayor parte de las bacterias aerobias y anaerobias facultativas que contienen citocromo

  143. Técnica: se coloca una gota de H2O2 al 30% sobre un portaobjetos y luego se transfiere una porción de colonia sobre H2O2 en el realizándose una emulsión.

  144. Resultados:

    Positivo: producción de burbujas (por liberación de oxígeno)

    Negativo: no se producen burbujas

  145. Prueba de Oxidasa

  146. Sirve para determinar la presencia de enzimas oxidasas

  147. La reacción de la oxidasa se debe a la presencia de un sistema citocromooxidasa

  148. Activa la oxidación del citocromo que es reducido por el oxígeno molecular que produce agua o peróxido de hidrógeno según la especie bacteriana

  149. Fermentación de Carbohidratos

  150. Son útiles para complementar los resultados de las pruebas de utilización de los hidratos de carbono

  151. Cuando existe alguna dificultad para la identificación definitiva de un organismos

  152. Producción de ácido sufhídrico en los medios TSI, KLIGGER, SIM

  153. TSI

  154. Tiosulfato de Sodio, es el sustrato necesario para la producción de:

  155. Ácido sulfhídrico, el sulfato de hierro y amonio

  156. SIM

  157. Las sepas móviles pueden apreciarse en este medio, por la turbidez que producen alrededor de la puntuación de siembra

  158. Las sepas productoras del ácido sulfhídrico se distinguen por la formación de un precipitado negro de sulfuro de hierro

  159. Kligler

  160. En el medio de cultivo, la peptona de carne y la tripteína, aportan los nutrientes adecuados para el desarrollo bacteriano.

  161. La lactosa y la glucosa son los hidratos de carbono fermentables

  162. Citrato

  163. Sirve para determinar si un organismo es capaz de utilizar citrato como única fuente de carbono

  164. Como única fuente de nitrógeno en su metabolismo, provocando una alcalinización del medio.

  165. Prueba de indol

  166. RM (Rojo de metilo)

  167. Es uno de los productos de degradación metabólica del aminoácido triptófano.

  168. Las bacterias que poseen la triptofanasa son capaces de hidrolizar y desaminar el triptófano con producción del indol, ácido pirúvico y amoníaco.

  169. Es utilizado para la diferenciación de organismos coliformes en base a las pruebas de Rojo de metilo y Voges.

  170. También es utilizado para la prueba para detectar a los altos productores de ácido.

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  172. Sem título
  173. Sem título
  174. Sem título
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  197. Sem título
  198. Sem título
  199. Sem título
  200. Sem título

Informações

Descrição
Fluxograma sobre Sem título, criado por Eleonor Rojas Saenz em 27-11-2020.
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