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Fluxograma

Sem título

Edwin Leonel López Cerezo Espanhol

Conteúdo do fluxograma

  1. Análisis Macroscópico de Manchas de Sangre

  2. Observación de la forma de la mancha de sangre

  3. a. Mancha caída desde < 50 cm: Forma circular con bordes dentados. b. Mancha caída desde > 50 cm:

  4. Forma circular con gotitas alrededor (rebote perpendicular).

    Forma piriforme si la caída es oblicua (mayor oblicuidad, forma más pronunciada).

  5. c. Agitación vigorosa del arma o manos:

  6. Indicadores de daño en arteria

  7. Patrones de manchas seguidas y continuas.

  8. Revisa y compara los patrones observados.

    Relaciona los patrones con posibles escenarios y movimientos.

  9. Observación de hilos de sangre:

  10. Prueba Toxicológica para Anfetaminas

  11. Recopilación de la Muestra

  12. ruta metabólica de las catecolaminas

  13. La tirosina es convertida a L-Dopa por la enzima tirosina hidroxilasa (TH).

  14. L-Dopa es convertida a dopamina por la enzima dopa descarboxilasa (DDC)

  15. La dopamina puede ser convertida a norepinefrina por la enzima dopamina beta-hidroxilasa (DBH), que requiere vitamina C y oxígeno.

  16. Las catecolaminas son liberadas en la hendidura sináptica y se unen a los receptores adrenérgicos en las células diana.

  17. La recaptación de catecolaminas es inhibida por algunos fármacos como la cocaína o los antidepresivos tricíclicos.

  18. La degradación de las catecolaminas se lleva a cabo por la acción de enzimas como la monoaminooxidasa (MAO) y la catecol-O-metiltransferasa (COMT).

  19. La MAO y la COMT están implicadas en la eliminación de catecolaminas del cuerpo.

  20. Catecolaminas

  21. Relación

  22. la relación entre la estructura química de los B-feniletilaminas y su actividad biológica sobre los receptores alfa y beta adrenérgicos.

  23. Estructura base

  24. La posición de los sustituyentes en el anillo aromático y en la cadena lateral de etilamina no solo influye en el mecanismo de acción simpaticomimético de los fármacos, sino que también influye en su selectividad hacia los receptores.

  25. Las características químicas mencionadas anteriormente son observadas en los compuestos simpaticomiméticos endógenos como la noradrenalina, la adrenalina y el isoproterenol.

  26. La estereoselectividad del sustituyente B-hidroxilo es un factor crítico en la interacción de un agonista adrenérgico con su receptor.

  27. Esta estereoselectividad se basa en la interacción de tres grupos farmacofóricos críticos con tres áreas complementarias de unión al receptor, lo que se conoce como la hipótesis de Easson-Stedman.

  28. receptores adrenérgicos

  29. alfa

  30. beta

  31. Dopamina

  32. Alfa-1A

  33. Alfa-1B

  34. Alfa-1D

  35. Alfa-2A

  36. Alfa-2B

  37. Alfa-2B

  38. Beta-1

  39. Beta-2

  40. Beta-3

  41. Dopamina-1

  42. Dopamina-2

  43. Identificación química de manchas secas de semen

  44. a recortar cuidadosamente la mancha seca de semen

  45. Coloque el recorte de la tela sobre un vidrio de reloj

  46. Utilizando pinzas limpias, sumerja la tela medio minuto en solución de eritrosina amoniacal al 0.05%

  47. Lavar con agua destilada la tela.

  48. Utilizando pinzas limpias, deshilache la tela sobre un portaobjetos

  49. Agregue solución salina al 0.09% con micropipeta

  50. Procedimiento para Observación y Análisis de Muestras de Pelo

  51. Colocar las muestras de pelo sobre una superficie blanca y observar su aspecto.

  52. Observación al Microscopio

  53. Colocar las muestras de pelo en un portaobjetos.

  54. Observar al microscopio sin ningún tratamiento previo.

  55. Observación Detallada al Microscopio decoloración previa

  56. Deshidratación

  57. Deshidratación: Colocar las muestras en alcohol absoluto durante 4 minutos.

  58. Desengrasado

  59. - Dejar que se sequen por evaporación.

  60. si

  61. No

  62. Repetir el proceso

  63. Antocianinas y efectos en el pigmento

  64. Pelar y cortar de 25 gramos la remolacha

  65. triturar en el mortero

  66. Añadir agua

  67. Decantar la solución

  68. Preparar marcando cada tubo de ensayo con un número

  69. colocar 5 ml del extracto en cada tubo de ensayo

  70. Tubo 1

  71. Tubo 2

  72. Tubo 3

  73. Tubo 4

  74. Tubo 5

  75. añadir unas gotas de ácido clorhídrico diluido

  76. Añadir unas gotas de vinagre

  77. añadir unas gotas de agua

  78. añadir un poco de bicarbonato de sodio

  79. añadir unas gotas de solución de hidróxido de sodio

  80. Comparar las coloraciones producidas en los cinco tubos

  81. fármacos que afectan la transmisión adrenérgica y colinérgica

  82. Los fármacos simpaticomiméticos actúan como agonistas adrenérgicos y estimulan la actividad del sistema nervioso simpático

  83. Epinefrina (adrenalina)

  84. Norepinefrina (noradrenalina)

  85. Isoproterenol

  86. Dopamina

  87. Salbutamol

  88. Los fármacos simpaticolíticos actúan como antagonistas adrenérgicos y bloquean la actividad del sistema nervioso simpático

  89. Clonidina

  90. Carvedilol

  91. Atenolol

  92. Fentolamina

  93. Metoprolol

  94. Los fármacos parasimpaticolíticos actúan como antagonistas colinérgicos y bloquean la actividad del sistema nervioso parasimpático.

  95. Tolterodina

  96. Atropina

  97. Oxitropio

  98. Tiotropio

  99. Ipatropio

  100. Adicionar etanol a la otra parte del extracto mientras se agita bien

  101. Agregar una gota de bálsamo y colocar el cubreobjetos.Observar al microscopio la presencia de espermatozoides de color rojo vivo

  102. Inicio

  103. Colocar 150 g de sacarosa en un beacker de 400 ml y añadir 1 g de pectina seca y mezclar

  104. Añadir 90 ml de agua

  105. Llevar a ebullición para obtener 65 grados °Brix

  106. Añadir 1 ml de agua al primer vaso

  107. 7. Añadir 7 ml de ácido al séptimo vaso

  108. 2. Añadir 1 ml de ácido al segundo vaso

  109. 3. Añadir 2 ml de ácido al tercer vaso

  110. 4. Añadir 3 ml de ácido al cuarto vaso

  111. 5. Añadir 4 ml de ácido al quinto vaso

  112. 6. Añadir 6 ml de ácido al sexto vaso

  113. Agregar 20 ml de la solución preparada anteriormente a cada vaso

  114. Mezclar los contenidos

  115. Observar el estado físico de cada vaso al final del periodo del laboratorio y después de 5 días

  116. Anotar los resultados.

  117. Identificación Química de Manchas de Sangre Seca

  118. Preparativos de seguridad y manejo de la muestra:

  119. Con pinzas limpias, deshilache la tela sobre el vidrio de reloj. Agregue solución salina al 0.09% con una micropipeta para cubrir completamente la muestra de tela.

  120. Observe la formación inmediata de color rojo.

  121. Lleve a ebullición una de las alícuotas contenidas en el beaker de 50 ml, sin permitir la evaporación completa.

  122. A la otra alícuota de la solución de la mancha de sangre, agregue 1 ml de reactivo de Meyer y dos gotas de peróxido de hidrógeno.

  123. Calcular el valor total de la ceniza y su porcentaje.

  124. Centrifugar nuevamente a 5 minutos a 2,000 rpm y eliminar el sobrenadante con una micropipeta hasta que quede un sedimento de 0.5 ml aproximadamente.

  125. Agitar un poco el tubo para homogenizar el sedimento polínico.

  126. Análisis macroscópico de las manchas de sangre

  127. Observe los tres distintos patrones de manchas de sangre que se le proporcionarán en el laboratorio

  128. dibújelos y descríbalos.

  129. Identifique la información que los patrones de sangre

  130. Enfríe la solución y colóquela sobre una superficie blanca. Agregue 1 ml de reactivo de Adler

  131. b. Luego, colocar las mismas muestras sobre una superficie negra y observar nuevamente.

  132. Transferir las muestras a un recipiente con éter por 1-2 minutos.

  133. Decoloración: Colocar las muestras en un recipiente con ácido nítrico concentrado por 4-5 minutos hasta que decoloren.

  134. Generar un informe detallado de las observaciones realizadas en cada etapa.

  135. Utilizando guantes, mascarillas y lentes de seguridad

  136. Dejar secar

  137. Se obtiene una muestra de orina o sangre de la persona.

  138. Se determina si las anfetaminas están presentes en concentraciones que indiquen el uso de estas sustancias.

  139. se analiza para detectar la presencia de anfetaminas o sus metabolitos

  140. cromatografía líquida o cromatografía de gases

  141. Investigación y desarrollo: Se realizan estudios para descubrir y desarrollar un nuevo medicamento.

  142. Preclínica: Se realizan estudios para evaluar la seguridad y la eficacia del nuevo medicamento en animales.

  143. Clínica: Se realizan estudios para evaluar la seguridad y la eficacia del nuevo medicamento en humanos.

  144. Registro: Se presenta una solicitud de autorización de comercialización del nuevo medicamento ante las autoridades sanitarias.

  145. Producción y comercialización: Se produce y comercializa el nuevo medicamento.

  146. Farmacovigilancia: Se monitorea la seguridad del nuevo medicamento después de su comercialización.

  147. Procesos de fabricación

  148. Papelería BPM

  149. Pesaje

  150. Preparación del área y equipos

  151. Molienda

  152. Mezclado

  153. Homogenizado

  154. Secado

  155. Tamizado

  156. homogenización

  157. Moledado

  158. Enfriado

  159. solidificación

  160. Desmoldeo

  161. Control de calidad

  162. acondicionamineto de empaque secundario y primario

  163. Gerente general

  164. Gerente de validación

  165. Jefe de producción

  166. Jefe de control de calidad

  167. jefe de área microbiología

  168. Jefe de garantía de calidad

  169. Jefe del área de mantenimiento

Informações

Descrição
Fluxograma sobre Sem título, criado por Edwin Leonel López Cerezo em 22-10-2022.
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