Flashcards

Grupo 2_Reporte 4_Sección E

Kathy Abigail Maldonado Polanco English 13 cards

Cards in this deck (13)

1Grupo 2 Reporte L-4 COLORACIONES: PAPANICOLAOU, WRIGHT Y GIEMSAKathy Abigaíl Maldonado Polanco, 201900212
María Lourdes Reyes Copen, 200911005
Maria José Citalán de León, 201908695
2Tinción de Papanicolaou (PAP)Nombre: coilocitos (flechas) / Aumento: 100X / Tinción: PAP / Fuente: Recuperado
de: http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0535-51332011000100002
Tinción policrómica que consta de una tinción nuclear y un contraste citoplásmicos, da buena deﬁnición del detalle nuclear, evidenciando el patrón de cromatina; un aspecto transparente del citoplasma.
Aplicación: frotis en general (vaginal, cervical, prostático) o para fluidos corporales (peritoneal, pleural, gástrico, etc)
Reactivos: Existen varias soluciones de Papanicolaou, pero todas son variantes de los siguientes colorantes.
-Hematoxilina de Harris (EA50, EA65,EA36) -Naranja G -Eosina
Resultados: núcleos: en azul, células acidófilas: rojo a naranja, etc. (Montes, 2008)
3Tricrómico de Masson.Nombre: Piel del ratón / Aumento: 40x / Tinción: Tricrómica de Masson / Fuente: Recuperado de: https://es.qwe.wiki/wiki/Masson's_trichrome_stain
Tinción tricrómica, la más simple, ya que ocupa solo dos colorantes aniónicos después de la tinción nucleica con hematoxilina férrica. Esta tinción es muy útil para poner de manifiesto las fibras de colágeno y para distinguir las células de los alrededores del tejido conectivo.
Aplicación: Muestras que han sido fijadas en solución de Bouin e incluidas en parafina. Se obtienen secciones de unas 8 µm adheridas a portaobjetos recubiertos con gelatina
Algunos Reactivos: Hematox. férrica de Weigert y Sol. A: Hematox. + Alcohol 95%
Resultados: Núcleos :Negros, Citop., queratina y fibras musculares: Rosa, rojas y café, Fibras col.: Azul-verde (Montes, 2008)
4Tricrómico de GallegoNombre: Osificación endocondral / Técnica: Tricrómico Cajal Gallego / Aumento: 40X / Fuente: Recuperado de:
https://elasadehenle.wordpress.com/histologia/tecnicahistologica/tecnicas-de-coloracion/
Se usan para la demostración de fibras colágenas y músculo. Se utilizan tres colorantes, uno nuclear y dos citoplasmáticos o extracelulares. En el Tricrómico Cajal Gallego el colorante nuclear es la fucsina acética y como colorante citoplasmático o extracelular el Picro Índigo Carmín, que consiste en varios colorantes.
Aplicación: -Obtención de cortes por congelación y fijación en formol al 10% durante 24 horas o más.
Reactivos: - Fucsina acética, - Fucsina fenicada de Ziehl, - Formol acético, etc.
Resultados: - Colágeno de azul, - Músculo de verde,- Citoplasma de amarillo, - Núcleo de verde (Lecuona, et,al., 2015).
5Tricrómico de GomoriNombre: Secciones de parafina de 8 µm de grosor teñidas en oreja de rata / Técnica: Tricrómico de Gomori / Aumento: 100X / Fuente: Recuperado de:
https://mmegias.webs.uvigo.es/6tecnicas/protocolos/p-tincion-t-Gomori.php
Puede teñir en forma diferenciada fibrina, tejido muscular y citoplasmas celulares. Es un método de tinción en un solo paso. El factor de diferenciación de tinción más importante está dado por el grado de permeabilidad que ofrecen las estructuras al paso de los colorantes empleados.
Aplicación: Cortes de tejidos fijados en formol o Bouin y embebidos en parafina.
Algunos Reactivos: Hematox. Ferrica De Weigert Sol. A y Hematox. Ferrica De Weigert Sol. B.
Resultados: Núcleos: Azul negro, Citop., fibrina y fibras musculares: Rojo; Colág., mucina y membranas basales:Azul (Montes, 2008)
6Tinción de VerhoeffNombre: Fibras elásticas de aorta / Aumento:400X / Tinción:Verhoeff / Fuente: Fortoul, 2012
Método tricrómico, utilizado para fibras elásticas. Forma enlaces catiónicos, aniónicos y no iónicos con la elastina, el constituyente principal del tejido elástico fibroso (Quiroga-Garza, 2019).
La tinción de Verhoeff permite ver:
a) Fibras elásticas negras.
b) Núcleos en negro.
c) Colágeno en rojo.
d) Otras estructuras en amarillo
(Fortoul, 2012).
7Tinción MalloryNombre: Tejido conectivo / Aumento: 200X / Tinción: Mallory / Fuente: Fortoul, 2012
Método tricrómico; es decir, utiliza varios colorantes, todos ácidos, que tiñen distintas estructuras tisulares. Es un método selectivo, ya que tiñen determinados componentes tisulares (Genser, 2000). Se utiliza para tejido nervioso y permite observar:
a) Núcleos, mielina y eritrocitos en rojo brillante.
b) Tejido conjuntivo, astrocitos, moco, amiloide, matriz ósea, cartilaginosa y otras sustancias hialinas en diferentes tonos de azul.
c) Fibras elásticas en rosa.
(Fortoul, 2012).
8Tinción de GiemsaNombre: Leucocito Basófilo / Aumento: 400X / Tinción: Giemsa / Fuente: Universidad de Zaragoza, S/F.
La técnica de Giemsa está formada por varios colorantes: los tintes neutros utilizados combinan el azul de metileno y el azur como tintes básicos y la eosina como tinte ácido, lo que da una amplia gama de colores. El azul de metileno es un colorante metacromático, de ahí que muchas estructuras se tiñan de púrpura y no de azul. Esta tinción es útil para descubrir parásitos en la sangre (Welsch & Sobotta, 2008).
No necesita fijación previa, se utiliza para estudiar la morfología de los elementos de la sangre, se utiliza en un extendido de sangre o frotis. Donde se puede observar:
a) Núcleos en azul. b) Eritrocitos en rojo. c) Cromatina y glóbulos blancos en morado, entre otros. (Fortoul, 2012)
9Tinción de WrightNombre: glóbulos rojos / Aumento: 600X / Tinción: Wright / Fuente: Brelje & Sorenson, 2019
Emplea generalmente para la diferenciación de elementos celulares de la sangre y es clasificada como una tinción policromática, dado que puede teñir compuestos ácidos o básicos.Compuesto por eosina y azul de metileno. La tonalidad resultante de la tinción con eosina es rosada-anaranjada para citoplasmas, y rojo intenso en el caso de los eritrocitos. El típico color de los núcleos celulares, mayoritariamente morado, se basa en la interacción molecular entre eosina y un complejo azul de metileno (López-Jácome, Hernández-Durán, Colín-Castro, Ortega-Peña, Cerón-González, & Franco-Cendejas, 2014)
La tinción de Wright tiene resultados similares al de tinción de Giemsa, mismos colores. (Fotoul, 2012)
10Ácido periódico de ShiffNombre: Corte de hígado / Técnica: PAS / Aumento: 40X / Fuente: Recuperado de: http://www.conganat.org/7congreso/trabajo.asp?id_trabajo=395
Es una de las tinciones más comúnmente utilizada en histología y se utiliza para evidenciar la presencia de grupos aldehídos formados por oxidación
previa de los hidratos de carbono.
El fundamento consiste en oxidar los tejidos mediante el ácido peryódico para
incrementar el número de grupos carbonilos (aldehídos o cetonas) presentes en ellos. Posteriormente, se trata la muestra con el reactivo de Schiff que reacciona con dos grupos aldehídicos contiguos dando lugar a una coloración rojo-púrpura característica.
Resultados: Núcleo: negro, Glucógeno, mucopolisacáridos, mucoproteínas, etc.: Rojo - Púrpura. (Panreac Química S.R.U., 2019)
11Método de PerlsNombre: Biopsia de médula osea / Técnica: Coloración de Perls / Aumento: 400X / Fuente: Recuperado de: https://www.researchgate.net/figure/Incremento-de-la-hemosiderina-Perls-400x_fig1_278158746
Reconocer las reservas de hierro (Fe) en la médula ósea (MO), que se encuentran en forma de hemosiderina, lo cual es importante para el diagnóstico de una variedad de patologías hematológicas.
Fundamento: El hierro depositado se libera por acción del ácido clorhídrico y reacciona con ferrocianuro potásico
para formar ferrocianuro férrico. Esta técnica pone en evidencia la presencia de complejos insolubles de Fe por la formación de un precipitado coloreado
(azul de Prusia). La intensidad del color evalua las reservas de Fe. Se observan al microscopio precipitados azul-turquesa (ferrocianuro férrico) en los puntos donde se han liberado los iones férricos. (Crudo, Erramouspe, Sueldo, Arias, 2016)
12Referencias Bibliográficas (1)- Brelje,T. & Sorenson R. L. (2019). Histology Guide. Recuperado de: http://histologyguide.org/
- Crudo, C., Erramouspe, B., Sueldo, E., Arias, M. (2016). Tinción de hierro medular. Coloración de Perls. Revista Hematología, 20(2), 243 - 246
- Fortoul, A. (2012). Histología y biología celular. México: McGraw Hill.
- Geneser, F. (2000). Histología. Editorial Médica Panamericana
- López-Jácome, L. E., Hernández-Durán, M., Colín-Castro, C. A., Ortega-Peña, S., Cerón-González, G., & Franco-Cendejas, R. (2014). Las tinciones básicas en el laboratorio de microbiología. Investig. en discapacidades, 3(1), 10-18.
- Lecuona, M., Castell, A., Sampedro, E. et al. (2015). Compendio de histología médica y biología celular. España: Elsevier, S. A.
13Referencias Bibliográficas (2)- Montes, M. (2008). Histología y Biología del Desarrollo, Manual de Practicas. México: Universidad Autónoma de Baja California.
- Panreac Química S.L.U. (2019). Tinción de PAS. Recuperado de: https://www.itwreagents.com/download_file/ce_ivd_instructions/CEIVD15/es/CEIVD15_es.pdf
-Quiroga Garza, A. (2019). Efectividad de dos métodos para la descelularización de
arterias umbilicales (Doctoral dissertation, Universidad Autónoma de Nuevo León).
- Universidad de Zaragoza. (S/F). Anejos cutáneos. Recuperado agosto 25 de 2020 de:
http://wzar.unizar.es/acad/histologia/inicio.html
- Welsch, U., & Sobotta, J (2008). Histología. Buenos Aires: Médica Panamericana.