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Fluxograma

Amiloidosis

Brigitte Romero Bedolla Bioquímica Otro Espanhol

Diagrama de flujo sobre amiloidosis: mutación del gen TTR, síntesis hepática, mal plegamiento de proteínas y apoptósis

Diagrama de flujo: Amiloidosis

Conteúdo do fluxograma

  1. Mutación en el gen TTR (cromosoma 18) en la síntesis hepática de TTR→ se transcribe y traduce una proteína TTR con Metionina en lugar de Valina en la posición 30 → desestabilización del tetrámero → monómeros mal plegados → oligómeros → fibrillas.

  2. Síntesis hepática de TTR normal ("silvestre") → (por la acción del estrés oxidativo a causa del envejecimiento) modificación de residuos de Metionina en la proteína → desestabilización del tetrámetro → disociación en monómeros inestables.

  3. Expansión clonal de células plasmáticas (a veces asociada a Mieloma Múltiple) → producción excesiva de cadenas ligeras de immunoglobulina (proteína LC) libres → se pliegan incorrectamente.

  4. Mal plegamiento de los monómeros de TTR o LC a causa de sus residuos hidrofóbicos.

  5. Los monómeros forman oligómeros solubles e hidrofóbicos = altamente citotóxicos

  6. Los oligómeros catalizan la agregación de más monómeros

  7. Se forman fibrillas amieloides insolubles

  8. Estructura central= lámina beta plegada = resistente a la proteólisis

  9. Se insertan en la membrana lípidica por su afinidad

  10. Se agrupan y forman poros = perforación de membrana

  11. Entrada masiva y descontrolada de Ca2+, y salida de K+

  12. Hipercalcemia intracelular = sobrecarga de mitocondrias y órganulos en un intento de absorverlo

  13. Pérdida de potencial de membrana mitocondrial

  14. Parálisis de la producción de ATP = déficit enernético celular y aumento en la liberación de ROS = estrés oxidativo

  15. Daño en lípidos, proteínas y ADN

  16. Estrés de RE = plegamiento incorrecto de proteínas

  17. Activación de UPR (unfolded Protein Response)

  18. Activación de las vías apoptóticas ante la persistencia del estrés

  19. El Ca2+ activa calpaínas

  20. Degrada enzimas celulares

  21. Potencia la liberación de citocromo

  22. Inicio de la cascada de las caspasas = enzimas ejecutoras de la apoptosis

  23. Toxicidad de oligómeros en miocitos

  24. Toxicidad de oligómeros en neuronas

  25. Toxicidad de oloigómeros en podocitos (apoptosis)

  26. Depósitos masivos = apoptosis de miocitos

  27. Adelgazamiento y debilidad del músculo

  28. Diástole y sístole deficientes = insuficiencia cardíaca con fracción de eyección preservada.

  29. Arritmias

  30. Filtro glomerular poroso = paso de la albumina

  31. Proteinuria

  32. Reducción de la presión oncótica

  33. agua en el espacio intravascular → agua en el intersticio

  34. Edema geenralizado

  35. Oligómeros + depósito amiloide → daño axonal + isquemia → neuropatía periférica (sensitiva + autonómica) → clínica característica.

  36. Nervios periféricos sensitivos

    Daño axonal → irritación → dolor, hormigueo, ardor → progresión → pérdida de sensibilidad

  37. Sistema nervioso autónomo

    Depósito + toxicidad en fibras autonómicas → hipotensión ortostática, disfunción eréctil, trastornos GI (diarrea, estreñimiento, náuseas por gastroparesia).

  38. Parámetros Bioquímicos de Diagnóstico en Amiloidosis

    1. Transtiretina sérica (TTR o Prealbúmina)

    Valores de referencia:

    Adultos: 20 – 40 mg/dL

    Niños: 25 – 45 mg/dL

    Valores bajos: < 20 mg/dL

    Interpretación de valores bajos:

    ​​​​Inflamación

    Malnutrición

    Enfermedad hepática

    En amiloidosis por transtiretina (ATTR):

    Reducción refleja desvío de TTR soluble hacia agregados insolubles en tejidos

    Puede verse influenciada por inflamación o terapias que disminuyen su producción

    2. Cadenas ligeras libres de inmunoglobulinas (kappa y lambda)

    Valores normales:

    Kappa: 3.3 – 19.4 mg/L

    Lambda: 5.7 – 26.3 mg/L

    Relación κ/λ: 0.26 – 1.65

    Valores elevados:

    Indican un proceso clonal de células plasmáticas, característico de amiloidosis AL

    Las cadenas ligeras se depositan como amiloide en los tejidos

  39. No Farmacológico: Trasplante de Hígado (ATTRv hereditaria)

    Hígado produce ~95% de TTR mutada → fuente principal de proteína defectuosa

    │

    ▼

    Trasplante de hígado sano

    │

    ▼

    - Nueva TTR producida será normal (silvestre)

    - Elimina producción de TTR mutada

    - La enfermedad deja de progresar

    - Los depósitos existentes pueden persistir

    - Estrategia: "cortar la fuente"

  40. Tratamiento

  41. Farmacológico: Estabilizadores de TTR (ej. Tafamidis)

    TTR mutada o silvestre → se desestabiliza → disociación en monómeros mal plegados

    │

    ▼

    Tafamidis → se une al sitio de unión de hormona tiroidea en el tetrámero

    │

    ▼

    - Incrementa la energía de activación para disociar el tetrámero

    - Estabiliza el tetrámero funcional

    - Reduce monómeros mal plegados

    - Previene formación de oligómeros y fibrillas

    - Resultado: frena progresión de la enfermedad

  42. Referencias

    Amyloid nomenclature 2018: Recommendations by the International Society of Amyloidosis (ISA) nomenclature committee. Amyloid, 25(4), 215–219. https://www.tandfonline.com/doi/full/10.1080/13506129.2018.1549825

    Blancas-Mejía, L. M., & Ramirez-Alvarado, M. (2013). Systemic amyloidoses. Annual Review of Biochemistry, 82, 745–774. https://www.annualreviews.org/doi/10.1146/annurev-biochem-072611-130030

    Cheng, B., Gong, H., Xiao, H., et al. (2013). Inhibiting toxic aggregation of amyloidogenic proteins: A therapeutic strategy for protein misfolding diseases. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - General Subjects, 1830(10), 4860–4871. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0304416513002110

    Ruberg, F. L., & Berk, J. L. (2022). Transthyretin (TTR) cardiac amyloidosis. Circulation, 145(1), 52–62. https://www.ahajournals.org/doi/10.1161/CIRCULATIONAHA.121.055018

    Sekijima, Y. (2015). Transthyretin (ATTR) amyloidosis: Clinical spectrum, molecular pathogenesis and disease-modifying treatments. Journal of Neurology, Neurosurgery, and Psychiatry, 86(9), 1036–1043. http://dx.doi.org/10.1136/jnnp-2014-308724

    Lane, T., Pinney, J. H., & Gilbertson, J. A. (2017). Renal amyloidosis: A review. The Journal of Nephrology, 30(2), 173–178. https://link.springer.com/article/10.1007/s40620-016-0392-4

    Vrana, J. A., Gamez, J. D., Madden, B. J., Theis, J. D., Bergen, H. R., 3rd, & Dogan, A. (2009). Classification of amyloidosis by laser microdissection and mass spectrometry-based proteomic analysis of clinical biopsy specimens. Blood, 114(24), 4957–4959. https://ashpublications.org/blood/article/114/24/4957/26400/Classification-of-amyloidosis-by-laser

    Adams, D., Koike, H., Slama, M., & Coelho, T. (2019). Hereditary transthyretin amyloidosis: A model of medical progress for a fatal disease. Nature Reviews Neurology, 15(7), 387–404. https://www.nature.com/articles/s41582-019-0210-4

Informações

Descrição
Historia natural de la enfermedad, tratamiento y parámetros bioquímicos
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