NMX-028 (MESA 4)

NMX-AA-028-1981

INTRODUCCION

• Demanda bioquímica de oxígeno (DBO5): Es una estimación de la cantidad de oxígeno que requiere una población microbiana heterogénea para oxidar la materia orgánica de una muestra de agua en un periodo de 5 días. El método se basa en medir el oxígeno consumido por una población microbiana en condiciones en las que se ha inhibido los procesos fotosintéticos de producción de oxígeno en condiciones que favorecen el desarrollo de los microorganismos.

OBJETIVO Y CAMPO DE APLICACION

• Esta norma mexicana establece el método de análisis para la determinación de la
• demanda bioquímica de oxígeno (DBO5) en aguas naturales, residuales y residuales
• tratadas.
• NOTA. Se determina la cantidad de oxígeno utilizada por una población
• microbiana heterogénea para transformar la materia orgánica, en un
• periodo de incubación de 5 días a 20ºC

REFERENCIAS

• Para la correcta aplicación de esta norma se deben consultar las siguientes normas
• mexicanas vigentes o las que las sustituyan:
• NMX-AA-012 SCFI-2001 Análisis de agua - Determinación de oxígeno disuelto en
• aguas naturales, residuales y residuales tratadas -
• Método de prueba.
• NMX-AA-100-1987 Calidad del agua – Determinación de cloro total – Método
• iodométrico. Declaratoria de vigencia publicada en el
• Diairo Oficial de la Federación del 22 de junio de 1987.

PRINCIPIO DEL METODO

• El método se basa en medir la cantidad de oxígeno que requieren los
• microorganismos para efectuar la oxidación de la materia orgánica presente en aguas
• naturales y residuales y se determina por la diferencia entre el oxígeno disuelto inicial
• y el oxígeno disuelto al cabo de cinco días de incubación a 20°C.
• Para la determinación de oxígeno disuelto (OD) se puede emplear cualquiera de los
• dos métodos establecidos en la norma mexicana NMX-AA-012-SCFI (ver 2
• Referencias)

DEFINICIONES

• Aguas naturales
• El agua cruda, subterránea y pluvial.
• Aguas residuales
• Las aguas de composición variada provenientes de las descargas de usos
• municipales, industriales, comerciales, de servicios, agrícolas, pecuarios, domésticos y
• en general de cualquier otro uso.
• Biota
• Es un conjunto de organismos vivos tanto de origen vegetal como animal.
• Bitácora
• Cuaderno de laboratorio debidamente foliado e identificado, en el cual los analistas
• anotan todos los datos de los procedimientos que siguen en el análisis de una
• muestra, así como todas las informaciones pertinentes y relevantes a su trabajo en el
• laboratorio.
• Blanco analítico o de reactivos
• Agua reactivo o matriz equivalente que no contiene, por adición deliberada, la
• presencia de ningún analito o sustancia por determinar, pero que contiene los mismos.
• Calibración
• Conjunto de operaciones que establecen, bajo condiciones específicas, la relación
• entre los valores de una magnitud indicados por un instrumento o sistema de
• medición, o los valores representados por una medida materializada y los valores
• correspondientes de la magnitud, realizados por los patrones, efectuando una
• corrección del instrumento de medición para llevarlo a las condiciones iniciales de
• funcionamiento.
• Demanda bioquímica de oxígeno (DBO5)
• Es una estimación de la cantidad de oxígeno que requiere una población microbiana
• heterogénea para oxidar la materia orgánica de una muestra de agua en un periodo de
• 5 días.
• nóculo
• Es una suspensión de microorganismos vivos que se han adaptado para reproducirse
• en un medio específico.
• Material de referencia
• Material o substancia en el cual uno o más valores de sus propiedades son
• suficientemente homogéneas y bien definidas, para ser utilizadas para la calibración
• de aparatos, la evaluación de un método de medición, o para asignar valores a los
• materiales.
• Parámetro
• Variable que se utiliza como referencia para determinar la calidad física, química y
• biológica del agua.
• Patrón (de medición)
• Medida materializada, aparato de medición o sistema de medición destinado a definir,
• realizar, conservar o reproducir una unidad o uno o varios valores conocidos de una
• magnitud para transmitirlos por comparación a otros instrumentos de medición

REACTIVOS Y PATRONES

• Todos los productos químicos usados en este método deben ser grado reactivo, a
• menos que se indique otro grado.
• Agua: Debe entenderse agua que cumpla con las siguientes características:
• a) Resistividad, megohm-cm a 25ºC: 0,2 min.;
• b) Conductividad, µS/cm a 25ºC: 5,0 máx., y
• c) pH: 5,0 a 8,0.
• Fosfato monobásico de potasio (KH2PO4),Fosfato dibásico de potasio (K2HPO4), Fosfato dibásico de sodio heptahidratado (Na2HPO4•7H2O), Cloruro de amonio (NH4Cl), Sulfato de magnesio heptahidratado (MgSO4•7H2O), Cloruro de calcio anhidro (CaCl2),Cloruro férrico hexahidratado (FeCl3•6H2O) , Ácido sulfúrico concentrado (H2SO4), Hidróxido de sodio (NaOH), Sulfito de sodio (Na2SO3) ,-cloro-6 (triclorometil) piridina, Glucosa grado patrón primario (C6H12O6) , Ácido glutámico grado patrón primario(C5H9NO4),Ácido clorhídrico (HCl), Acido nítrico (HNO3)
• Disolución amortiguadora de fosfato. Pesar aproximadamente 8,5 g de
• fosfato monobásico de potasio, 21,75 g de fosfato dibásico
• de potasio, 33,4 g de sosfato dibásico de sodio
• heptahidratado (ver inciso 5.3) y 1,7 g de cloruro de amonio, disolver en 500 mL de agua y aforar a 1 L. El pH de la disolución debe
• ser de 7,2. Desechar el reactivo (o cualquiera de los siguientes reactivos)
• si hay algún signo de crecimiento biológico en el frasco de
• almacenamiento.
• 5.17 Disolución de sulfato de magnesio. Pesar aproximadamente 22,5 g de
• sulfato de magnesio heptahidratado, disolver en agua y
• diluir a 1 L.
• 5.18 Disolución de cloruro de calcio. Pesar aproximadamente 27,5 g de cloruro
• de calcio anhídro, disolver en agua y diluir a 1 L.
• Disolución de cloruro férrico. Pesar aproximadamente 0,25 g de cloruro
• férrico hexahidratado (ver inciso 5.7), disolver en agua y diluir a 1 L.
• 5.20 Disolución de ácido sulfúrico (0,1N). Agregar aproximadamente 2,8 mL de
• ácido sulfúrico concentrado (ver inciso 5.8) a 500 mL de agua, mezclar
• bien y diluir hasta 1 L.
• 5.21 Disolución de hidróxido de sodio (0,1N). Pesar aproximadamente 4,0 g de
• hidróxido de sodio (ver inciso 5.9), disolver en agua y diluir a 1 L.
• 5.22 Disolución de sulfito de sodio. Pesar aproximadamente 1,575 g de sulfito
• de sodio (ver inciso 5.10), disolver en agua y diluir a 1 L. Esta disolución no
• es estable; por lo que debe prepararse diariamente.
• 5.23 Disolución patrón de glucosa-ácido glutámico. Secar glucosa y ácido
• glutámico a 103ºC durante una hora. Pesar aproximadamente y con
• precisión 150,0 mg de glucosa (ver inciso 5.12) y 150,0 mg de ácido
• glutámico (ver inciso 5.13), diluir en agua y aforar a 1 L. Preparar
• inmediatamente antes de usarla. Esta disolución tiene una DBO5 de 198
• mg/L.
• 5.24 Disolución de cloruro de amonio. Pesar aproximadamente 1,15 g de
• cloruro de amonio (ver inciso 5.4) y disolver en 500 mL de agua, ajustar el
• pH a 7,2 con disolución de hidróxido de sodio (ver inciso 5.21) y aforar a
• 1 L. La disolución contiene 0,3 mg N/mL.

EQUIPOS Y MATERIALES

• Equipo
• Equipo de aireación con difusor
• Incubador: Controlado por termostato a 20ºC ± 1ºC. Eliminar toda la luz
• para evitar la posibilidad de producción fotosintética de oxígeno disuelto.
• Balanza analítica con precisión de 0,1 mg
• Medidor de oxígeno disuelto
• Material
• Limpieza del material.
• Todo el material usado en la determinación debe ser exclusivo para este
• procedimiento. Para el lavado del material remojar durante 1 h en unadisolución de ácido sulfúrico al 10 % y enjuagar con agua. Los detergentes
• con base de amoniaco no deben usarse para la limpieza del material.
• Los contenedores de las muestras deben lavarse con disolución de
• detergente no iónico, libre de metales, enjuagarse con agua, remojarse
• en ácido toda la noche y volver a enjuagarse con agua libre de metales.
• Para el material de cuarzo, politetrafloroetileno o material de vidrio debe
• dejarse remojando de 12 h a 24 h con HNO3 (1:1), HCl (1:1) o con agua
• regia (3 partes de HCl concentrado + 1 parte de HNO3 concentrado) a
• 70o
• C solo en los casos que presente material adherido, después debe ser
• enjuagado con agua libre de metales.
• En los casos de que el material presente grasas, enjuagar con acetona y/o
• hexano.
• Botellas Winkler de vidrio para incubación con capacidad de 300 mL de
• aforo total y con boca estrecha, reborde y tapón de vidrio esmerilado, de
• forma cónica.
• Contratapa de politetrafloroetileno u otro material plástico para botella
• Winkler.
• Bureta

RECOLECCIÓN, PRESERVACIÓN Y ALMACENAMIENTO DE MUESTRAS

• En el caso de aguas naturales debe tomarse un mínimo de 1 L de muestra
• en un envase de polietileno o vidrio. En el caso de aguas residuales (DBO5
• mayores a 50 mg/L) deben tomarse mínimo 100 mL. Pueden utilizarse
• muestras simples o compuestas.
• No se debe agregar ningún preservador a las muestras. Solo deben
• conservarse a 4ºC hasta su análisis.
• El tiempo máximo de almacenamiento previo al análisis es de 24 h.

CONTROL DE CALIDAD

• Cada laboratorio que utilice este método debe operar un programa de
• control de calidad (CC) formal.
• El laboratorio debe mantener los siguientes registros:
• Los nombres y títulos de los analistas que ejecutaron los análisis y el
• encargado de control de calidad que verifica los análisis, y
• - Las bitácoras manuscritas del analista y del equipo en los que se
• contengan los siguientes datos:
• a) Identificación de la muestra;
• b) Fecha del análisis;
• c) Procedimiento cronológico utilizado;
• d) Cantidad de muestra utilizada;
• e) Número de muestras de control de calidad analizadas;
• f) Trazabilidad de las calibraciones de los instrumentos de medición;
• g) Evidencia de la aceptación o rechazo de los resultados, y
• h) Además el laboratorio debe mantener la información original
• reportada por los equipos en disquetes o en otros respaldos de
• información.
• De tal forma que permita a un evaluador externo reconstruir cada determinación
• mediante el seguimiento de la información desde la recepción de la muestra hasta el
• resultado final

CALIBRACION

• Se debe contar con la calibración de los equipos y materiales siguientes:
• Material volumétrico
• Balanza analítica
• Medidor de oxígeno disuelto

PROCEDIMIENTO

• Control de la glucosa-ácido glutámico
• Comprobar en cada lote analítico la calidad del agua de dilución, la efectividad
• del inóculo y la técnica analítica mediante determinaciones de la DBO5 en muestras
• estándar de concentración conocida. Utilizar la disolución de glucosa-ácido
• glutámico (ver inciso 5.23) como disolución madre de control. La glucosa tiene una
• tasa excepcionalmente alta y variable de oxidación, pero cuando se utiliza con ácido
• glutámico, dicha tasa se estabiliza y es similar a la obtenida en muchas aguas
• residuales municipales. Alternativamente, si un agua residual particular contiene un
• componente principal identificable que contribuya a la DBO5, utilizar este compuesto
• en lugar de la glucosa-ácido glutámico. Determinar la DBO5 de una disolución al 2 %
• de la disolución de control patrón de glucosa-ácido glutámico utilizando las técnicas.
• Control del inóculo
• Determinar la DBO5 del material de siembra como para cualquier otra muestra. Esto es
• una siembra control. A partir de este valor y de uno conocido de la dilución del material
• de siembra (en el agua de dilución) determinar el consumo de OD de la siembra. Lo
• ideal es hacer disoluciones tales de la siembra que la mayor cantidad de los
• resultados presenten una disminución de al menos el 50 % del OD. La representación
• de la disminución del OD (mg/L) con respecto a los mililitros de siembra, tiene que ser
• una línea recta cuya pendiente corresponde a la disminución de OD por mililitro del
• inóculo. La intersección del eje de las abscisas (OD) representa el consumo del
• oxígeno causado por el agua de dilución y debe ser inferior a 0,1 mg/L (ver inciso
• 10.8). Para determinar el consumo de OD de una muestra, se resta el consumo de OD
• de la siembra, del consumo de OD total. La captación de OD total del agua de dilución
• sembrada debe oscilar entre 0,6 mg/L y 1,0 mg/L.
• Muestras sobresaturadas con OD
• En aguas frías o en aguas donde se produce la fotosíntesis (aguas de
• embalses), es posible encontrar muestras que contienen más de 9,0 mg
• OD/L a 20ºC. Para evitar la pérdida de oxígeno durante la incubación de
• tales muestras, reducir el OD por saturación, calentando la muestra
• aproximadamente a 20°C en frascos parcialmente llenos mientras se
• agitan con fuerza o se airean con aire limpio, filtrado y comprimido. Ajustar la temperatura de la muestra a 20°C ± 1°C antes de hacer
• diluciones.
• Determinación del OD inicial
• Método yodométrico
• La determinación del OD inicial se realiza por medio del método yodométrico de azida
• modificado, de acuerdo a lo establecido en la norma mexicana NMX-AA-012-SCFI
• Método electrométrico
• La determinación del OD inicial se realiza por medio del método electrométrico
• con electrodo de membrana, de acuerdo a lo establecido en la norma mexicana NMXAA-012-SCFI Los aceites, grasas o cualquier sustancia que se
• adhiera a la membrana puede ser causa de baja respuesta en el electrodo.
• Determinación del OD final
• Después de 5 días de incubación determinar el OD en las diluciones de la muestra, en
• los controles y en los blancos. La medición del OD debe ser realizada inmediatamente
• después de destapar la botella de Winkler, para evitar la absorción de oxígeno del aire
• por la muestra.

CALCULOS

• Calcular la DBO5
• Cuando no se utilice inóculo ni diluciones:
• DBO5 (mg/L) = ODi mg/L - OD5 mg/L
• ODi mg/L es el oxígeno disuelto inicial, y
• OD5 mg/L es el oxígeno disuelto al quinto día
• Cuando se emplea una dilución:
• DBO5 (mg/L) = ODi mg/L - OD5 mg/L / % de dilución expresado en decimales
• Cuando se utiliza inóculo
• Sin dilución:
• DBO5 (m/L)= (ODi mg/L - OD5 mg/ L) - C1 (B1 - B2 ) (Vt) / C2(Vm)
• Con dilución:
• DBO5 (m/L)=[ (ODi mg/L - OD5 mg/ L) - C1 (B1 - B2 ) (Vt )] / C2(Vm)
• B1 es el OD del inóculo antes de la incubación, en mg/L;
• B2 es el OD del inóculo después de la incubación, en mg/L;
• C1 es el volumen de inóculo en la muestra;
• C2 es el volumen de inóculo en el inóculo control;
• Vt es el volumen total del frasco Winkler, y
• Vm es el volumen de muestra sembrada
• Expresar los resultados como CDBO5 sí se inhibe la nitrificación. Reportar los resultados en mg/L de DBO5 con dos cifras significativas con
• la presición (media, desviación estándar) correspondiente

INTERFERENCIAS

• El pH ácido o alcalino
• Cloro residual
• Nitritos: Es la interferencia más común en las muestras de DBO5
• incubadas.
• Sustancias inorgánicas y orgánicas reductoras

SEGURIDAD

• No ha sido determinada la carcinogenicidad de todos los reactivos, por lo
• que cada sustancia química debe tratarse como peligro potencial a la
• salud. La exposición a estas sustancias debe reducirse al menor nivel
• posible. Se sugiere que el laboratorio realice inspecciones de higiene
• ocupacional de cada reactivo a los que pueda estar expuesto el analista y
• que dichos resultados estén a su disposición.Este método puede no mencionar todas las precauciones de seguridad
• asociadas con su uso. El laboratorio es responsable de mantener un
• ambiente de trabajo seguro y un archivo de las normas de seguridad
• respecto a la exposición y manejo seguro de las substancias químicas
• especificadas en éste método. Debe tenerse un archivo de referencia de
• las hojas de información de seguridad el cual debe estar disponible a todo
• el personal involucrado en estos análisis. Cuando se trabaje con cualquiera de los compuestos químicos descritos
• en este método, debe usar todo el tiempo equipo de seguridad, tal como:
• batas, guantes de látex y lentes de seguridad. La preparación de todos los reactivos usados en este método debe
• efectuarse bajo una campana de extracción. Consulte las hojas de
• seguridad sobre manipulación y disposición de éstos El ácido sulfúrico es un compuesto químico debe manejarse con extremo
• cuidado. El adicionar ácido sulfúrico concentrado al agua produce una
• fuerte reacción exotérmica por lo cual esto debe realizarse muy lentamente
• con agitación y enfriamiento externo.

MANEJO DE RESIDUOS

• Es responsabilidad del laboratorio cumplir con todos los reglamentos federales,
• estatales y locales referentes al manejo de residuos, particularmente las reglas de
• identificación, almacenamiento y disposición de residuos peligrosos.
• Cada laboratorio debe contemplar dentro de su programa de control de
• calidad el destino final de los residuos generados durante la determinación.
• Los desechos ácidos se deben neutralizar para su posterior desecho.
• Todas las muestras que cumplan con la norma de descarga al
• alcantarillado pueden ser descargadas en el mismo.

INTEGRANTES ( MESA 4)

• Jesus Eduardo Chavez Ortiz
• Leonardo Miguel Echeverría Santana
• Katherine Elizabeth Espinosa Rivera
• Rodrigo Ruiz Gallegos
• Luis Erick Villalobos Venegas
• Flavio Eduardo Nicolás Rodríguez Rubio
• Fernando Gerardo Trejo Juarez
• Carlos Antonio Granados Molina