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Métodos de laboratorio para el estudio de la hemostasia y coagulación
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Métodos de laboratorio para el estudio de la hemostasia y coagulación
Tiempo de sangrado
- Medición in vivo de la hemostasia primaria
- Método Duke (1910)
- Punción en el lóbulo de la oreja con una lanceta estéril y se registra el tiempo que tarda en suspenderse la hemorragia.
- Método Ivy (1941)
- Aplicar un mango de presión en el brazo del paciente a 40 mmHg. Se hacen 2 o 3 incisiones en la superficie anterior del antebrazo.
- Mango de presión
- Inhibe la influencia de los capilares
- Acorta tiempo de hemorragia no dependiente de la función plaquetaria
- Inhibe la influencia de los capilares
- Mango de presión
- Aplicar un mango de presión en el brazo del paciente a 40 mmHg. Se hacen 2 o 3 incisiones en la superficie anterior del antebrazo.
- 1969, Mielke
- Tiempo de hemorragia con plantilla.
- Producen cortes de 9 o 5mm de ancho y 1mm de profundidad.
- Tiempo de hemorragia normal: 1-9 minutos.
- Mide la capacidad de las plaquetas para formar un tapón hemostásico primario.
- Tiempo de hemorragia normal: 1-9 minutos.
- Producen cortes de 9 o 5mm de ancho y 1mm de profundidad.
- Tiempo de hemorragia con plantilla.
Cuenta de plaquetas
- Método manual o en cámara de Neubauer
- cuantifica plaquetas diluidas en oxalato de amonio al 1% observadas en cámara de Neubauer por microscopia de contraste de fase
- El recuento se hace en los 400 cuadritos centrales.
- El volumen obtenido X factor de dilución (100)
- N° de plaquetas x mm3 = No. De plaquetas contadas X dilución X 10
- El volumen obtenido X factor de dilución (100)
- El recuento se hace en los 400 cuadritos centrales.
- cuantifica plaquetas diluidas en oxalato de amonio al 1% observadas en cámara de Neubauer por microscopia de contraste de fase
- Valores normales 150,000 – 450,000 mm3
- Método manual o en cámara de Neubauer
Prueba del torniquete
- También es llamada le prueba de fragilidad capilar; se usa en los trastornos de los vasos sanguíneos
- Se utiliza para el diagnóstico diferencial de enfermedades como:
- Dengue
- Trombocitopenia
- Púrpura vascular
- Escorbuto
- Hemofilia
- Valores normales: Sin petequias o negativa (1-2 petequias)
- TECNICA
- 1.-Someter al antebrazo del paciente a una presión intermedia entre la sistólica y la diastólica durante 5 minutos.
- 2.-Tras la retirada del manguito de presión y esperar a que la piel recupere su estado relajado se observa la zona presionada.
- 3.-El conteo de petequias producidas por la ruptura capilar en un área de unos 10 cm2 .
- En caso de ser positiva, estas petequias se reportan de 1+ a 4+ dependiendo del número visibles de petequias en el área
- 0 a 10 = 1+ 10 a 20 = 2+ 20 a 50 = 3+ 50 o más petequias = 4+
- En caso de ser positiva, estas petequias se reportan de 1+ a 4+ dependiendo del número visibles de petequias en el área
Tiempo de tromboplastina parcial
- Prueba hematológica que examina el tiempo que le toma a la sangre coagularse y puede ayudar a establecer si hay algún problema de sangrado o de hemostasia
- Tiempo de cefalina activada
- Mide el tiempo que tarda en coagular una muestra de plasma del paciente con un reactivo que contiene: 1.-fosfolípidos y, 2.-activador de sílice
- Proporciona una superficie que participa en un cambio del factor XII plasmático, lo que produce su activación
- El factor XIIa forma un complejo con otros dos componentes plasmáticos
- Cininógeno de alto peso molecular (factor Fitzgerald) Precalicreína (factor Fletcher).
- Estas glicoproteínas plasmáticas denominadas factores de activación por contacto, inician la formación del coágulo in vitro, pero no participan en la coagulación in vivo
- El factor XIIa forma un complejo con otros dos componentes plasmáticos
- Proporciona una superficie que participa en un cambio del factor XII plasmático, lo que produce su activación
- Se utiliza para el estudio de los factores de la vía intrínseca de la coagulación, monitorización del tratamiento con heparina no fraccionada o presencia de anticoagulante lúpico u otros inhibidores.
- PROCEDIMIENTO
- COAGULOMÉTRICO
- El plasma del paciente es incubado con una cantidad óptima de fosfolípidos, una superficie de contacto cargada negativamente y tampón, lo que inicia la activación de la vía intrínseca de la coagulación.
- Después de una incubación a 37ºC durante un determinado periodo de tiempo, la adición de cloruro de Ca desencadena el proceso de la coagulación y se mide el tiempo requerido para la formación del coágulo.
- El plasma del paciente es incubado con una cantidad óptima de fosfolípidos, una superficie de contacto cargada negativamente y tampón, lo que inicia la activación de la vía intrínseca de la coagulación.
- COAGULOMÉTRICO
- Medicamentos que pueden alterar el examen
- antihistamínicos, vitamina C (ácido ascórbico), ácido acetilsalicílico (aspirin) clorpromazina (Thorazine)
- Coagulación normal 25 a 35 segundos
- Prueba hematológica que examina el tiempo que le toma a la sangre coagularse y puede ayudar a establecer si hay algún problema de sangrado o de hemostasia
Tiempo de protrombina
- Mejor prueba de detección de las anormalidades en la vía extrínseca.
- Mide: Activación del factor X. Reacciones en la vía común: factor I, II, V, VII y X
- Formación del coagulo. De 11 a 15 seg.
Tiempo de trombina
- Tiempo de fibrinógeno a fibrina al agregarse trombina
- Muestra: Plasma citratado, se le agrega citrato de sodio
- Formación de coágulo en 15 – 20 segundos
- Prolongado: Deficiencia de fibrinogeno, disfibrogenemia, inhibidores circulantes (heparina, plasmina, PDF)
- Tiempo de fibrinógeno a fibrina al agregarse trombina
Cuantificación de fibrinógeno
- Cantidad de fibrinógeno en plasma
- 1.6 – 3.2 g/l 160-320 mg/dl Método de Clauss
- Baja: deficiencias congénitas o adquiridas de fibrinógeno (afibrinogenemia, hipofibrinogenemia o disfibrinogenemia)
- Alta: Indicador de riesgo para enfermedades vasculares arteriales( IAM, apoplejía)
- Cantidad de fibrinógeno en plasma
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- Mind Map on Métodos de laboratorio para el estudio de la hemostasia y coagulación, created by hugmelvill on 07/05/2015.
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